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Terreni pronti all'uso

Dey-Engley Neutralizing Broth ISO

Terreno liquido per le colture di arricchimento nei cosmetici, secondo le norme ISO.

Codice
LC-5077
Formato
10 flaconi da 100 mL
Controllo qualità ISO 17025
Sì
Conservazione
da 8 a 25 °C
Validità minima garantita
6 mesi

Inizialmente Dey ed Engley svilupparono questo terreno nel 1983 per recuperare gli stafilococchi danneggiati chimicamente. Oggi il suo uso si è esteso alla verifica di diversi aspetti nell'applicazione di disinfettanti e conservanti.

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CodiceFormatoPrezzo
LC-507710 flaconi da 100 mL

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Caratteristiche principali

Applicazioni

Arricchimento con neutralizzanti (uso generale).

Settori

Cosmetico.

Presentazione

10 flaconi pronti da 125 mL con 100 ± 3 mL.

Confezione

1 scatola con 10 flaconi da 125 mL. Tappo perforabile: sottotappo a vite in plastica. Si sconsiglia l'uso di aghi per siringa con diametro superiore a 0,8 mm.

Descrizione e tecnica

La formulazione attuale contiene sostanze neutralizzanti per quasi tutti i prodotti attivi usati come conservanti nella produzione cosmetica. La lecitina neutralizza i composti di ammonio quaternario (QAC); il polisorbato agisce sui fenoli e sulla formalina; il tioglicolato neutralizza i composti organomercuriali; il tiosolfato-solfito inattiva i composti alogenati e la lecitina + il polisorbato neutralizzano l'etanolo e gli altri composti alcolici.

Le norme ISO indicano questo terreno come alternativa per l'arricchimento colturale nella rilevazione dei batteri mesofili aerobi (ISO 21149), nella rilevazione di Escherichia coli (ISO 21150) e per verificare la presenza di Pseudomonas aeruginosa (ISO 22717) e di Staphylococcus aureus (ISO 22718).

Inoculare secondo lo scopo finale, i campioni e i metodi validati.

Se il prodotto è solubile in acqua, un campione adatto (1 g o 1 mL) si trasferisce in 9 mL di D/E Neutralizing Broth. Se il prodotto non è solubile in acqua, va prima sciolto con polisorbato 80 o con un altro prodotto emulsionante.

D/E Neutralizing Broth con il campione si incuba poi a 32,5 ± 2,5 °C per almeno 20 ore e non più di 72 ore, prima del trapianto su un terreno solido adatto per l'isolamento delle colonie.

Presentazione

Presentazione10 flaconi pronti da 125 mL
Riempimento100 ± 3 mL
Confezione1 scatola con 10 flaconi da 125 mL. Tappo perforabile: sottotappo a vite in plastica. Si sconsiglia l'uso di aghi per siringa con diametro superiore a 0,8 mm.

Composizione

Componenteg/L
Triptone5,00
Estratto di lievito2,50
Destrosio10,00
Lecitina7,00
Polisorbato 805,00
Tiosolfato di sodio6,00
Bisolfito di sodio2,50
Tioglicolato di sodio1,00
Porpora di bromocresolo0,02

Controllo qualità

Controllo fisico-chimico

ColoreVioletto
pH7,6 ± 0,2 a 25 °C

Controllo microbiologico

Inoculare con 10³-10⁴ UFC (prova qualitativa).

Aerobiosi. Incubazione a 30-35 °C. Lettura a 24-48 h.

MicrorganismoCrescita
Escherichia coliATCC 8739, WDCM 00012Buona. Recupero su D/E Neutralizing Agar
Bacillus subtilisATCC 6633, WDCM 00003Buona. Recupero su D/E Neutralizing Agar
Staphylococcus aureusATCC 6538, WDCM 00032Buona. Recupero su D/E Neutralizing Agar
Ps. aeruginosaATCC 9027, WDCM 00026Buona. Recupero su D/E Neutralizing Agar
Candida albicansATCC 10231, WDCM 00054Buona. Recupero su D/E Neutralizing Agar

Controllo di sterilità

Incubazione 48 ore a 30-35 °C e 48 ore a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.

Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.

Bibliografia

  • ATLAS, R.M. & L.C. PARKS (1993) Handbook of Microbiological Culture Media. CRC Press. Boca Raton. Fla.
  • DEY, B.P. & F.B. ENGLEY (1983) Methodology for recovery of chemically treated Staphylococcus aureus with neutralizing medium. Appl. Environm. Microbiol. 453:1533-1537.
  • HICKEY, P.J., C.E. BECKELHEIMER & T. PARROW (1992) Microbiological tests for equipment, containers, water and air. In R.T. Marshall (Ed.) Standard Methods for the Examination of Dairy Products. 16th ed. APHA. Washington.
  • ISO 11133:2014/Amd 1:2018. Microbiology of food, animal feed and water. Preparation, production, storage and performance testing of culture media.
  • ISO 18415 Standard (2017) Cosmetics - Microbiology - Detection of specified and non-specified microorganisms.
  • ISO 18416 Standard (2015) Cosmetics - Microbiology - Detection of Candida albicans.
  • ISO 21149 Standard (2017) Cosmetics - Microbiology - Enumeration and detection of aerobic mesophilic bacteria.
  • ISO 21150 Standard (2015) Cosmetics - Microbiology - Detection of Escherichia coli.
  • ISO 22717 Standard (2015) Cosmetics - Microbiology - Detection of Pseudomonas aeruginosa.
  • ISO 22718 Standard (2015). Cosmetics - Microbiology - Detection of Staphylococcus aureus.

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