Terreni pronti all'uso
Sabouraud Dextrose Agar with Chloramphenicol
Terreno per la conta e la coltivazione di lieviti e funghi sulle superfici.
- Codice
- LC-4528
- Categoria
- Terreni pronti all'uso
- Formato
- 30 piastre a contatto Rodac da 65 mm
- Conservazione
- da 2 a 25 °C
- Validità minima garantita
- 2 mesi
- Disponibile anche
- Terreno pronto all'uso, 3 formati (LC-908)
Questo terreno di coltura si differenzia dal classico Sabouraud Agar solo per l'aggiunta di cloramfenicolo. Questo antibiotico termostabile ha un ampio spettro antibatterico, che assicura l'isolamento selettivo dei funghi da campioni molto contaminati da batteri.
Caratteristiche principali
Conta selettiva di lieviti e muffe.
Monitoraggio ambientale, alimenti, coltivazione generale, farmaceutico e veterinario.
30 piastre a contatto irradiate, doppio involucro, con 15 ± 2 mL.
1 scatola con 5 blister (PET laminato e busta in PPBO) da 6 piastre a contatto. Ogni confezione ha un indicatore di irraggiamento (8-14 kGy).
Descrizione e tecnica
Tecnica
Le piastre a contatto si usano nel controllo microbiologico della disinfezione e della pulizia delle superfici. Agiscono contemporaneamente da campionatore e da terreno di coltura per l'incubazione, senza bisogno di altri passaggi intermedi.
Le piastre hanno una forma adatta a questa funzione e si possono usare con diversi terreni di coltura, a seconda del tipo di microrganismo da controllare. In media le piastre offrono una superficie di contatto di circa 25 cm².
Per l'uso, togliere il coperchio e premere delicatamente il terreno di coltura sulla superficie da controllare, assicurando il contatto tra le due superfici. Si toglie la piastra a contatto e la si chiude con il coperchio, per evitare la contaminazione dall'aria. Si consiglia di fissare il coperchio con nastro adesivo e di etichettare il fondo con i dati del campionamento (luogo, data e ora).
Se le superfici da campionare sono ruvide, le piastre a contatto non fanno un buon contatto, anche aumentando la pressione. In questi casi si consiglia di delimitare un'area di 25 cm², strofinarla energicamente con un tampone sterile bagnato e poi strofinare il tampone sulla piastra a contatto.
Se si verifica l'efficacia di un processo di pulizia o di disinfezione, le piastre a contatto vanno usate entro due ore dalla fine del processo, assicurandosi che la superficie da campionare sia asciutta. Si consiglia di includere sempre controlli positivi, campionando l'area prima della disinfezione o le zone sporche accanto all'area disinfettata.
Il tecnico stabilisce la frequenza del campionamento e della disinfezione secondo criteri di prestazione. Applicare l'agar direttamente sulla superficie da monitorare, distribuendo la pressione su tutta la piastra per 10 secondi. Pulire la superficie in cui è stato raccolto il campione, per togliere ogni traccia di agar.
Le piastre inoculate si incubano a 32-35 °C per 24-48 ore e si esaminano ogni giorno. Per i funghi l'incubazione si esegue a 22-25 °C per 5 giorni, con esame giornaliero.
Nota: le piastre a contatto si usano per monitorare la contaminazione microbiologica delle superfici e dell'aria in camere bianche, isolatori, RABS, industrie alimentari e ospedali. Il doppio/triplo involucro irradiato garantisce che la confezione stessa non contamini l'ambiente, perché il primo involucro si toglie appena prima di entrare nell'area pulita.
Le piastre vanno conservate nella confezione originale (blister) per garantirne la stabilità fino alla data di scadenza.
Presentazione
| Presentazione | 30 piastre a contatto irradiate, doppio involucro |
|---|---|
| Riempimento | 15 ± 2 mL |
| Confezione | 1 scatola con 5 blister (PET laminato e busta in PPBO) da 6 piastre a contatto. Ogni confezione ha un indicatore di irraggiamento (8-14 kGy). |
Composizione
| Componente | g/L |
|---|---|
| D(+) glucosio | 40,00 |
| Peptone di caseina | 5,00 |
| Peptone di carne | 5,00 |
| Agar | 15,00 |
| Cloramfenicolo | 0,05 |
Controllo qualità
Controllo fisico-chimico
| Colore | Giallo paglierino |
|---|---|
| pH | 5,6 ± 0,2 a 25 °C |
Controllo microbiologico
Inoculo: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività) / 10⁴-10⁶ (selettività).
Metodologia analitica secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018; A2:2020.
Aerobiosi. Incubazione a 22,5 ± 2,5 °C. Lettura a 24-72 h per i batteri e a 3-5 giorni per lieviti e muffe.
Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.
| Microrganismo | Crescita |
|---|---|
| Aspergillus brasiliensisATCC 16404, WDCM 00053 | Buona (≥ 50 %) |
| Escherichia coliATCC 8739, WDCM 00012 | Inibito |
| Candida albicansATCC 10231, WDCM 00054 | Buona (≥ 50 %) |
| Saccharomyces cerevisiaeATCC 9763 | Buona (≥ 50 %) |
| Bacillus subtilisATCC 6633, WDCM 00003 | Inibito |
Controllo di sterilità
Incubazione 48 h a 30-35 °C e 48 h a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.
Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.
Bibliografia
- AJELLO, L. (1957) Cultural Methods for Human Pathogenic Fungi. J. Chron. Dis. 5:545-551.
- EUROPEAN PHARMACOPOEIA 6.0 (2008) 6th ed. § 2.6.13. Microbiological examination of non-sterile products: Test for specified microorganisms. EDQM. Council of Europe. Strasbourg.
- GEORGE, L.K., AJELLO, L. & PAPAGEORGE, C. (1954) Use of Cycloheximide in the Selective Isolation of Fungi Pathogenic to Man. J. Lab. Clin. Med, 44 (422-428).
- ISO 11133:2014/Amd 1:2018. Microbiology of food, animal feed and water. Preparation, production, storage and performance testing of culture media.
- PAGANO, J. LEVIN, J.D. & TREJO, W. (1957-58) Diagnostic Medium for Differentiation of Species of Candida. Antibiotics Annual, 137-143.
- SABOURAUD, R. (1910) Les Teignes. Masson, Paris.
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