Terreni pronti all'uso
Lysine Iron Agar
Terreno differenziale per gli enterobatteri.
- Codice
- LC-4007
- Categoria
- Terreni pronti all'uso
- Formato
- 20 provette
- Conservazione
- da 8 a 25 °C
- Validità minima garantita
- 3 mesi
- Disponibile anche
- Terreno disidratato, 1 formato (LC-1044)
Il terreno LIA permette la differenziazione delle Enterobacteriaceae in base alla loro capacità di deaminare e decarbossilare la lisina e di produrre idrogeno solforato.
Caratteristiche principali
Applicazioni
Differenziazione degli enterobatteri e di Salmonella arizonae.
Settori
Alimenti.
Presentazione
20 provette a becco di clarino da 16 x 113 mm con 7,5 ± 0,3 mL.
Confezione
1 scatola con 20 provette di vetro da 16 x 113 mm, etichettatura a inchiostro e tappo metallico.
Descrizione e tecnica
Descrizione
È stato sviluppato per l'identificazione dei ceppi di Salmonella arizonae, soprattutto di quelli che fermentano rapidamente il lattosio. Nel TSI, i ceppi che fermentano il lattosio producono un'acidificazione del terreno che impedisce la produzione di idrogeno solforato. In Lysine Iron Agar, le specie di Salmonella si identificano per la loro capacità di decarbossilare la lisina e di produrre idrogeno solforato.
Il peptone di gelatina e l'estratto di lievito sono fonti di azoto, carbonio, vitamine e minerali. Il citrato ferrico ammonico e il tiosolfato di sodio sono indicatori della produzione di idrogeno solforato, con la formazione di un precipitato nero di solfuro di ferro. Il porpora di bromocresolo è un indicatore di pH. Lo zucchero fermentabile è il glucosio e la fermentazione provoca l'acidificazione del fondo della provetta, che diventa gialla. La lisina è il substrato della lisina decarbossilasi e della lisina deaminasi. La decarbossilazione della lisina alcalinizza il terreno, che diventa porpora. La deaminazione della lisina porta alla formazione di composti rossi o arancioni in presenza di ossigeno (sulla superficie del terreno).
Nei ceppi lisina decarbossilasi negativi, l'acidificazione del fondo della provetta può impedire la rilevazione della produzione di idrogeno solforato. Per questo le specie di Proteus che producono idrogeno solforato non possono annerire il terreno.
Tecnica
Da una singola colonia, con un ago da inoculo, seminare per infissione il fondo e fare uno striscio sulla superficie inclinata.
Le provette si incubano in aerobiosi (con il tappo svitato) a 35 ± 2 °C per 24 h.
Presentazione
| Presentazione | 20 provette a becco di clarino da 16 x 113 mm |
|---|---|
| Riempimento | 7,5 ± 0,3 mL |
| Confezione | 1 scatola con 20 provette di vetro da 16 x 113 mm, etichettatura a inchiostro e tappo metallico. |
Composizione
| Componente | g/L |
|---|---|
| Peptone di gelatina | 5,00 |
| Estratto di lievito | 3,00 |
| Destrosio | 1,00 |
| Lisina | 10,0 |
| Citrato ferrico ammonico | 0,50 |
| Tiosolfato di sodio | 0,04 |
| Porpora di bromocresolo | 0,02 |
| Agar | 15,00 |
Controllo qualità
Controllo fisico-chimico
| Colore | Violetto |
|---|---|
| pH | 6,7 ± 0,2 a 25 °C |
Controllo microbiologico
Inoculare per infissione nel fondo + striscio sul becco.
Aerobiosi. Incubazione a 35 ± 2 °C, lettura dopo 18-24 ore.
| Microrganismo | Crescita |
|---|---|
| Escherichia coliATCC 25922, WDCM 00013 | A. becco/fondo: porpora; H₂S (-) |
| Proteus mirabilisATCC 43071 | A. becco: rosso; A. fondo: giallo ocra; H₂S (-) |
| Salmonella typhimuriumATCC 14028, WDCM 00031 | A. becco/fondo: porpora; H₂S (+) |
| Shigella flexneriATCC 12022, WDCM 00126 | A. becco: porpora; A. fondo: giallo ocra; H₂S (-) |
Controllo di sterilità
Incubazione 48 ore a 30-35 °C e 48 ore a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.
Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.
Bibliografia
- ATLAS, R.M., L.C. PARKS (1993) Handbook of Microbiological Media. CRC Press, Inc. London.
- DOWNES, F.P. & K. ITO (2001) Compendium of methods for the microbiological examination of foods. 4th ed. APHA. Washington.
- EDWARS, P.R., & FIFE, MARY A. (1961) Lysine-Iron Agar in the detection of Arizona cultures. Appl. Microbiol 99, 478-480.
- EWING, J. (1982) Edwars and Ewing's identification of Enterobacteriaceae. 4th ed. Elsevier Sci. Pub. Co. Inc. N.Y.
- HORWITZ, W. (2000) Official Methods of Analysis. 17th ed. AOAC International. Gaithersburg. MD. USA.
- MARSHALL, R.T. (1992) Methods for the examination of dairy products. 16th ed. APHA. Washington.
- MacFADDIN, J.F. (1985) Media for the isolation, cultivation, identification and maintenance of medical bacteria. William & Wilkins. Baltimore.
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