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Terreni disidratati

OF Basal Medium (Hugh And Leifson)

Per l'identificazione dei bacilli non fermentanti.

Codice
LC-1500
Formato
500 g
Conservazione
da 2 a 25 °C
Validità minima garantita
15 mesi

OF Basal Medium (Hugh And Leifson) è un terreno semisolido, preparato secondo la formula di Hugh e Leifson, che si usa per determinare il metabolismo (ossidazione, fermentazione) dei batteri Gram-negativi. È utile per Pseudomonas, Salmonella, Shigella e Alcaligenes.

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CodiceFormatoPrezzo
LC-1500500 g

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Caratteristiche principali

Applicazioni

Differenziazione dei batteri Gram-negativi non fermentanti.

Settori

Prove di sensibilità agli antimicrobici.

Preparazione

9,8 g in un litro di acqua distillata; scaldare fino a dissoluzione, sterilizzare in autoclave a 121 °C per 15 minuti.

Principio e uso

Il peptone di caseina fornisce azoto, vitamine, minerali e aminoacidi essenziali per la crescita. Il blu di bromotimolo è l'indicatore di pH. Il cloruro di sodio fornisce gli elettroliti essenziali per il trasporto e l'equilibrio osmotico. Il fosfato dipotassico agisce da sistema tampone. L'agar batteriologico è l'agente solidificante.

Specifiche tecniche

SolubilitàSenza residui
AspettoPolvere fine
Colore del terreno disidratatoBeige con una sfumatura verdastra
Colore del terreno preparatoVerde bluastro
pH finale (25 °C)7,1 ± 0,2
Quantità per litro9,8 g
Conservazioneda 2 a 25 °C

Formula

Componenteg/L
Blu di bromotimolo0,03
Agar batteriologico2,5
Peptone di caseina2
Fosfato dipotassico0,3
Cloruro di sodio5

Formula tipica in g/L, adattata e/o integrata secondo necessità per soddisfare i criteri di prestazione.

Preparazione e uso

Preparazione

Sospendere 9,8 grammi di terreno in un litro di acqua distillata. Scaldare agitando spesso fino a dissoluzione. Sterilizzare in autoclave a 121 °C per 15 minuti. Aggiungere a 100 mL di terreno liquido 10 mL di una soluzione di glucosio (o di un altro zucchero adatto) al 10 %, sterilizzata per filtrazione. Mescolare e distribuire in asepsi 5 mL per provetta. Se si preferisce, aggiungere 1,0 grammi di carboidrato direttamente a 100 mL di terreno e sterilizzare in autoclave a 118 °C per 10 minuti, per evitare la degradazione dello zucchero.

Istruzioni per l'uso

  1. Inoculare per infissione 2 provette fresche con una coltura fresca del microrganismo in esame. Se il terreno è stato preparato e conservato, rifonderlo a bagnomaria per eliminare i gas disciolti.
  2. Dopo l'inoculo, aggiungere a una delle provette uno strato di olio di paraffina da 4 a 5 mm. Non si raccomanda di usare olio minerale.
  3. Incubare entrambe le provette a 35 °C per 48 ore o più, fino a 7 giorni, con i tappi allentati.
  4. Per facilitare l'identificazione dei bacilli Gram-negativi non fermentanti, usare anche Indole Nitrate Medium (LC-1504).

Risultati:

  1. Fermentazione: colore giallo in entrambe le provette, con o senza gas.
  2. Ossidazione: colore giallo solo nella provetta senza olio.
  3. Nessuna ossidazione/fermentazione: nessuna variazione del colore delle provette. I carboidrati non sono stati fermentati né ossidati. Microrganismi inerti, per esempio Alcaligenes faecalis.

Controllo qualità

Prova microbiologica

Condizioni di incubazione: 37 ± 1 °C / 48-72 h.

  • K = alcalino, verde (senza variazione)
  • A = acido, giallo
  • G = gas, talvolta percettibile
MicrorganismoSpecificaReazione caratteristica senza zuccheroReazione caratteristica con glucosio
Shigella flexneriATCC 12022Crescita buonaAperta: K, chiusa: KAperta: A, chiusa: A
Salmonella enteritidisATCC 13076Crescita buonaAperta: K, chiusa: KAperta: AG, chiusa: AG
Escherichia coliATCC 25922Crescita buonaAperta: K, chiusa: KAperta: AG, chiusa: AG
Pseudomonas aeruginosaATCC 27853Crescita buonaAperta: K, chiusa: KAperta: K, chiusa: K
Alcaligenes faecalisATCC 8750Crescita buonaAperta: K, chiusa: KAperta: K, chiusa: K

Bibliografia

  • Hugh, R. and Leifson, E. J. Bact. 66:24-26. 1953.
  • Lisenko J. Gen. Microbiol., 35:379, 1961.
  • Edwards and Ewing Identification of Enterobacteriaceae. Burgess Publ. Co. Minneapolis, Minn., 1972.

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