Preston Campylobacter Supplement ISO

Descrizione

La differenza tra Preston Mod. e Preston consiste nella sostituzione della cicloesimide con l'amfotericina.

Il terreno completo integrato è stato formulato appositamente per essere adatto all'isolamento delle specie di Campylobacter da tutti i tipi di campioni (umani, animali, aviari e ambientali).

Tecnica

Raccogliere, diluire e preparare campioni e volumi secondo le specifiche, le direttive, le norme ufficiali e/o i risultati attesi.

Ricostituire la fiala con 6 mL del diluente sterile in condizioni asettiche e aggiungerla a 475 mL del terreno base raffreddato a 50 °C, già integrato con 25 mL di sangue defibrinato lisato di cavallo o di pecora.

Non surriscaldare dopo l'aggiunta del supplemento.

Preston Campylobacter Selective Agar Base

Versare il terreno completo in piastre e inocularlo per striscio o con il metodo a spirale.

Incubare le piastre in condizioni di microaerofilia a 40-42 °C per 48-72 h.

Campylobacter spp. crescono meglio a 42 °C (tranne Campylobacter fetus subsp. fetus).

Preston Broth Base

Versare il terreno completo in provette e inocularlo.

Incubare le piastre in condizioni di microaerofilia a 40-42 °C per 48-72 h.

Campylobacter spp. crescono meglio a 42 °C (tranne Campylobacter fetus subsp. fetus).

Trapiantare su Preston Campylobacter Selective Agar o su Campylobacter Blood-Free Selective Agar.

A seconda del campione e delle specifiche possono essere necessari tempi di incubazione più lunghi di quelli indicati sopra o temperature di incubazione diverse.

Ogni laboratorio deve valutare i risultati secondo le proprie specifiche.

L'isolamento presuntivo di Campylobacter sp. va confermato con ulteriori prove microbiologiche e biochimiche.

Ricostituire la fiala liofilizzata originale aggiungendo 6 mL di acqua distillata sterile.

Nota: ogni fiala è sufficiente per integrare 500 mL di Campylobacter Preston Medium Base (solido o liquido).

Controllo fisico-chimico

Controllo microbiologico

Inoculare 30-300 UFC (produttività), 1000-10.000 UFC (selettività).

Distribuire in piastre da 90 mm il terreno completo, raffreddato a 50 °C.

Atmosfera microaerofila. Incubazione a 40-42 °C per 48-72 h.

Controllo di sterilità

100 mL di TSB e 100 mL di Thioglycollate.

Incubazione 48 ore a 30-35 °C e 48 ore a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.

Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.

• BOLTON, F.J. & L. ROBERTSON (1982) A selective medium for isolating Campylobacter jejuni/coli. J. Clin. Pathol. 35:462-467.
• BOLTON, F.J., D. COATES, P.M. HINCHLIFFE & L. ROBERTSON (1983) Comparative of selective media for isolation of Campylobacter jejuni/coli. J. Clin. Pathol. 36:78-83.
• CORRY, J.E.L., H.I. ATABAY, S.J. FORSYTHE & L.P. MANSFIELD (2003) Culture Media for the Isolation of Campylobacters, Helicobacters and Arcobacters, in Corry et al. (Eds) Handbook of Culture Media for Food Microbiology Chap 18 pgs 271-316. Elsevier Science B.V. Amsterdam.
• ISO 10272-1 Standard (2017) Microbiology of the food chain - Horizontal Method for detection and enumeration of Campylobacter spp. - Part 1: Detection method.
• ISO 11133:2014/Amd 1:2018. Microbiology of food, animal feed and water. Preparation, production, storage and performance testing of culture media.