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Terreni pronti all'uso

XLD Agar (Xylose Lysine Desoxycholate Agar) ISO

Terreno per l'isolamento delle specie enteropatogene, in particolare Shigella e Salmonella, negli alimenti e nei mangimi, secondo le norme ISO.

Codice
LC-847
Formato
20 piastre da 90 mm
Controllo qualità ISO 17025
Sì
Conservazione
da 2 a 14 °C
Validità minima garantita
1 mese
Norme
ISO 19250ISO 21567ISO 6579

Xylose Lysine Deoxycholate Agar è un terreno selettivo e differenziale, adatto alla rilevazione degli enterobatteri patogeni negli alimenti, in particolare Shigella. Una modifica della formulazione originale di Taylor permette al terreno di rispondere alle specifiche delle norme ISO. Il microbiota Gram-positivo è inibito dalla bassa quantità di desossicolato, mentre Shigella cresce.

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CodiceFormatoPrezzo
LC-84720 piastre da 90 mm

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Caratteristiche principali

Applicazioni

Rilevazione e isolamento selettivo di Salmonella.

Settori

Alimenti, acque.

Norme

ISO 19250, ISO 21567, ISO 6579.

Presentazione

20 piastre pronte da 90 mm con 21 ± 2 mL.

Descrizione e tecnica

La fermentazione dello xilosio, del lattosio o del saccarosio produce l'acidificazione del terreno, che si vede dal viraggio al giallo dell'indicatore intorno alle colonie. Questo colore scompare dopo 24 ore, quindi le letture vanno fatte tra 18 e 24 ore.

La produzione di solfuri dal tiosolfato si rileva facilmente, perché le colonie diventano più scure per il precipitato di solfuro ferrico. Nel terreno si può osservare anche la decarbossilazione della lisina a cadaverina, perché produce un'alcalinizzazione e di conseguenza l'indicatore vira al rosso.

Tutte queste reazioni permettono una buona differenziazione di Shigella: oltre a Edwardsiella e Proteus inconstans, è l'unico enterobatterio che non fermenta lo xilosio e quindi mostra una reazione di fermentazione negativa. Salmonella fermenta lo xilosio, ma questo viene consumato rapidamente e il terreno diventa alcalino per la decarbossilazione della lisina, il che può mascherare la reazione. La differenza tra Shigella e Salmonella è che le colonie di quest'ultima diventano più scure per i precipitati di solfuro ferroso, una caratteristica comune anche a Edwardsiella. Gli altri tipi di enterobatteri non subiscono questo fenomeno, perché l'accumulo di acido dovuto alla fermentazione del lattosio e del saccarosio è così alto da impedire, nelle prime 24 ore, il ritorno del pH per decarbossilazione e anche il precipitato di solfuro ferroso.

Nel controllo qualità sono riportati gli aspetti tipici delle colonie di Enterobacteriaceae dopo 24 ± 3 h di incubazione a 37 °C.

Presentazione

Presentazione20 piastre pronte da 90 mm
Riempimento21 ± 2 mL
Confezione1 scatola con 2 buste di cellophane da 10 piastre.

Composizione

Componenteg/L
Xilosio3,750
L-lisina5,000
Lattosio7,500
Saccarosio7,500
Cloruro di sodio5,000
Estratto di lievito3,000
Rosso fenolo0,080
Desossicolato di sodio1,000
Tiosolfato di sodio6,800
Citrato ferrico ammonico0,800
Agar15,000

Controllo qualità

Controllo fisico-chimico

ColoreRosso
pH7,4 ± 0,2 a 25 °C

Controllo microbiologico

Semina a spirale: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività) / 10⁴-10⁶ UFC (selettività).

Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.

Aerobiosi. Incubazione a 37 ± 1 °C, lettura dopo 24 ± 3 h.

MicrorganismoCrescita
Enterococcus faecalisATCC 29212, WDCM 00087Inibito
Salmonella typhimuriumATCC 14028, WDCM 00031Buona - terreno di coltura e colonie rossi, centro nero (H₂S +)
Salmonella entericaATCC 13076, WDCM 00030Buona - terreno di coltura e colonie rossi, centro nero (H₂S +)
Escherichia coliATCC 25922, WDCM 00013Inibizione parziale

Controllo di sterilità

Incubazione 48 ore a 30-35 °C e 48 ore a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.

Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.

Bibliografia

  • ATLAS, R.M., L.C. PARK (1993) Handbook of Microbiological Media for the examination of Food. CRC Press Inc. Boca Raton.
  • DOWNES, F.P. & K. ITO (2001) Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Foods. 4th ed. APHA. Washington DC. USA.
  • HORWITZ, W. (2000) Official Methods of Analysis of the AOAC International. 17th ed. Gaithersburg. MD. USA.
  • ICMSF (1978) Microorganisms in Foods 1. University of Toronto Press.
  • ISO Standard 6579-1 (2017) Microbiology of food chain - Horizontal method for the detection, enumeration and serotyping of Salmonella - Part 1: Detection of Salmonella spp.
  • ISO 11133:2014/Amd 1:2018. Microbiology of food, animal feed and water. Preparation, production, storage and performance testing of culture media.
  • ISO 21567 Standard (2004) Microbiology of food and animal feeding stuffs - Horizontal method for the detection of Shigella spp.
  • PASCUAL ANDERSON, Mª R. (1992) Microbiología Alimentaria. Díaz de Santos, S.A. Madrid.
  • TAYLOR, W.J. (1965) Isolation of Shigella. I. Xylose Lysine Agars: New media for isolation of enteric pathogens. Am. J. Clin. Path 44:471-475.
  • US FDA (Food and Drug Administration) (1998) Bacteriological Analytical Manual 8th ed. AOAC International. Gaithersburg. MD. USA.

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