Terreni pronti all'uso
Baird Parker Agar
Terreno di coltura solido selettivo per lo screening degli stafilococchi da campioni di vario tipo, secondo le farmacopee e le norme ISO.
- Codice
- LC-4743
- Categoria
- Terreni pronti all'uso
- Formato
- 30 piastre da 55 mm per acque
- Controllo qualità ISO 17025
- Sì
- Conservazione
- da 2 a 25 °C
- Validità minima garantita
- 2 mesi
Baird Parker Agar è raccomandato per la rilevazione e la conta degli stafilococchi negli alimenti e in altri materiali, perché permette una buona differenziazione dei ceppi coagulasi-positivi. La crescita dei batteri di accompagnamento è di solito soppressa dall'alta concentrazione di litio, glicina e piruvato. Il litio e la glicina favoriscono la crescita degli stafilococchi. A volte nel terreno possono crescere alcune specie di Bacillus, lieviti e, molto raramente, Proteus.
Caratteristiche principali
Presentazione
30 piastre pronte da 55 mm per filtrazione con 9 ± 2 mL.
Confezione
1 scatola con 6 buste di plastica da 5 piastre da 55 mm.
Controllo
Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.
Descrizione e tecnica
Descrizione
La presenza di tellurito e tuorlo d'uovo permette di differenziare le colonie di stafilococchi presuntivamente patogeni. C'è un'alta correlazione tra la prova della coagulasi e la presenza di zone chiare di lipolisi in questo terreno, dovute alla lecitinasi stafilococcica. Gli studi mostrano che quasi il 100 % degli stafilococchi coagulasi-positivi è in grado di ridurre il tellurito, cosa che produce colonie nere, mentre gli altri stafilococchi non sempre ci riescono.
Tecnica
Raccogliere, diluire e preparare campioni e volumi da filtrare secondo le specifiche, le direttive, le norme ufficiali e/o i risultati attesi.
Filtrare il campione su una membrana con pori da 0,45 µm e porla sulla superficie dell'agar.
Incubare le piastre non capovolte, in aerobiosi, a 37 ± 1,0 °C per 48 ± 2 h.
(A seconda del campione, delle specifiche, ecc., possono essere necessari tempi di incubazione più lunghi di quelli indicati sopra o temperature di incubazione diverse.)
Dopo l'incubazione, contare tutte le colonie sulla superficie della membrana.
Calcolare la carica microbica totale per mL di campione moltiplicando il numero medio di colonie per membrana per l'inverso del fattore di diluizione. Riportare i risultati come unità formanti colonia (UFC) per mL, insieme al tempo e alla temperatura di incubazione.
Limiti d'uso: la MF ostacola la formazione dell'alone (lecitinasi) sulla superficie della piastra, quindi per le colonie sospette di essere S. aureus patogeni è necessario confermare questa prova. Le colonie nere vanno confermate direttamente nel terreno Baird Parker o nel terreno BP-RPF.
Presentazione
| Presentazione | 30 piastre pronte da 55 mm per filtrazione |
|---|---|
| Riempimento | 9 ± 2 mL |
| Confezione | 1 scatola con 6 buste di plastica da 5 piastre da 55 mm. |
Composizione
| Componente | g/L |
|---|---|
| Peptone di caseina | 10,0 |
| Piruvato di sodio | 10,0 |
| Glicina | 12,0 |
| Estratto di carne | 5,00 |
| Cloruro di litio | 5,00 |
| Estratto di lievito | 1,00 |
| Agar | 15,0 |
| Emulsione di tuorlo d'uovo | 50,0 mL |
| Tellurito di potassio all'1 % | 10,0 mL |
Controllo qualità
Controllo fisico-chimico
| Colore | Giallo |
|---|---|
| pH | 7,2 ± 0,2 a 25 °C |
Controllo microbiologico
Filtrazione su membrana / intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività) / 10⁴-10⁶ UFC (selettività) / ≥ 10³ UFC (specificità).
Aerobiosi. Incubazione a 37 ± 1 °C, lettura dopo 24-48 ± 2 h.
Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.
| Microrganismo | Crescita |
|---|---|
| Stph. aureusATCC 25923, WDCM 00034 | Buona. Colonie nere/grigie con alone. Lecitinasi (+) |
| Escherichia coliATCC 8739, WDCM 00012 | Inibito |
| Staphylococcus aureusATCC 6538, WDCM 00032 | Buona. Colonie nere/grigie con alone. Lecitinasi (+) |
| Stph. epidermidisATCC 12228, WDCM 00036 | Colonie nere/grigie senza alone. Lecitinasi (-) |
| Staphylococcus saprophyticusATCC 15305 | Colonie nere/grigie senza alone. Lecitinasi (-) |
Controllo di sterilità
Incubazione 48 ore a 30-35 °C e 48 ore a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.
Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.
Bibliografia
- ATLAS R.M. & L.C. PARKS (1993) Handbook of Microbiological Media. CRC Press. London.
- BAIRD-PARKER, A.C. (1962) An improved diagnostic and selective medium for isolating coagulase-positive staphylococci. J. Appl. Bact. 25:12.
- COLIPA (1997) Guidelines on Microbial Quality Management (MQM). Brussels.
- DOWNES, F.P. & K. ITO (2001) Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Foods. 4th ed. APHA. Washington. USA.
- EUROPEAN PHARMACOPOEIA (2007) 5th ed. Suppl. 5.6 § 2.6.13 Microbiological examination of non-sterile products. EDQM. Council of Europe. Strasbourg.
- FIL-IDF 60:2001 Standard. Lait et produits à base de lait - Detection des staphylocoques à coagulase positive - Technique du nombre le plus probable. Brussels.
- ISO 5944:2001 Standard. Milk and Milk based products - Detection of coagulase positive staphylococci - MPN Technique. Geneva.
- ISO 6888-1:1999/Amd 2:2018. Standard. Microbiology of food and animal feeding stuffs - Horizontal method for the enumeration of coagulase-positive staphylococci (Staphylococcus aureus and other species) - Part 1 Technique using Baird-Parker Agar medium. Amendment 2: Inclusion of an alternative confirmation test using RPFA stab method.
- ISO 6888-2:1999 Standard. Microbiology of food and animal feeding stuffs - Horizontal method for the enumeration of coagulase-positive staphylococci - Part 1 Technique using rabbit plasma fibrinogen agar medium. Geneva.
- ISO 11133:2014/Amd 1:2018. Microbiology of food, animal feed and water. Preparation, production, storage and performance testing of culture media.
- ISO 22718 Standard (2015). Cosmetics - Microbiology - Detection of Staphylococcus aureus.
- USP 31 - NF 26 (2008) <61> Microbial Limit Tests. US Pharmacopeial Conv. Inc. Rockville. MD. USA.
- ZANGERL, P. & H. ASPERGER (2003) Media used in the detection and enumeration of Staphylococcus aureus. In Handbook.
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