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Terreni pronti all'uso

MRS Agar

Terreno di coltura solido per la rilevazione, l'isolamento e la coltivazione dei lattobacilli e di altri batteri lattici da alimenti e bevande, secondo de Man, Rogosa e Sharpe.

Codice
LC-943
Formati
3 formati
Controllo qualità ISO 17025
Sì
Norme
ISO 15214

MRS Agar è un terreno usato per la coltivazione dei lattobacilli. È una modifica di un terreno basato sulle proprietà altamente nutritive del succo di pomodoro. L'aggiunta di magnesio, manganese e acetato, insieme al polisorbato, dà un terreno migliore per la crescita dei lattobacilli, comprese specie molto esigenti come Lactobacillus brevis e Lactobacillus fermentum.

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CodiceFormatoPrezzo
LC-94320 piastre da 90 mmconservazione da 2 a 14 °C, validità minima 1 mese
LC-410920 provetteconservazione da 8 a 25 °C, validità minima 4 mesi
LC-469110 flaconi da 200 mLconservazione da 8 a 25 °C, validità minima 4 mesi

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Caratteristiche principali

Applicazioni

Arricchimento selettivo dei lattobacilli.

Settori

Bevande alcoliche, prodotti lattiero-caseari, alimenti.

Norme

ISO 15214.

Controllo

Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.

Descrizione e tecnica

Descrizione

La qualità dei peptoni, insieme agli estratti di carne e di lievito, riunisce tutti i fattori di crescita necessari che fanno del terreno MRS uno dei migliori terreni per la coltivazione dei lattobacilli.

Poiché la selettività di questo terreno è bassa e i contaminanti tendono a crescere, per aumentare la selettività si raccomanda il trapianto in un terreno solido (a doppio strato) e poi in brodo. In molti casi la crescita è favorita dall'incubazione in atmosfera arricchita di CO₂.

Il terreno MRS è particolarmente raccomandato per la conta e il mantenimento dei lattobacilli, sia con la tecnica MPN in brodo sia con l'inoculo su piastra, ricoperta poi con un secondo strato di terreno fuso. Questa tecnica evita la necessità di un'atmosfera arricchita di CO₂.

Tecnica

Raccogliere, diluire e preparare campioni e volumi secondo le specifiche, le direttive, le norme ufficiali e/o i risultati attesi.

Seminare la piastra per striscio o con il metodo a spirale. Incubare le piastre non capovolte, in atmosfera di CO₂, a 30 ± 1 °C per 72 ± 3 h.

(A seconda del campione, delle specifiche, ecc., possono essere necessari tempi di incubazione più lunghi di quelli indicati sopra o temperature di incubazione diverse. Questo terreno si può inoculare direttamente o dopo un brodo di arricchimento come MRS broth, incubato in condizioni di microaerofilia per favorire l'arricchimento dei lattobacilli.)

Dopo l'incubazione, contare tutte le colonie comparse sulla superficie dell'agar.

Ogni laboratorio deve valutare i risultati secondo le proprie specifiche.

Calcolare la carica microbica totale per mL di campione moltiplicando il numero medio di colonie per piastra per l'inverso del fattore di diluizione, se è stato seminato un campione diluito. Riportare i risultati come unità formanti colonia (UFC) per mL o per g, insieme al tempo e alla temperatura di incubazione.

LC-4109 e LC-4691, provette e flaconi

Fondere il terreno contenuto nelle provette (LC-4109) o nei flaconi (LC-4691) a bagnomaria o nel forno a microonde, evitando di surriscaldarlo, prima di versarlo in piastre di Petri una volta raffreddato a temperatura ambiente.

Una volta solidificato su una superficie piana, seminare la piastra per striscio o con il metodo a spirale. Incubare le piastre non capovolte, in aerobiosi, a 30 ± 1 °C per 72 ± 3 h.

(A seconda del campione, delle specifiche, ecc., possono essere necessari tempi di incubazione più lunghi di quelli indicati sopra o temperature di incubazione diverse; un'umidità adeguata e la presenza di anidride carbonica stimolano le colture. Questo terreno si può inoculare direttamente o dopo un brodo di arricchimento come MRS broth, incubato in condizioni di microaerofilia per favorire l'arricchimento dei lattobacilli.)

Nota (LC-4691): i terreni solidi si possono fondere in modi diversi: autoclave, bagnomaria e, se il cliente lo ritiene opportuno, anche il forno a microonde. Se si sceglie il forno a microonde, bisogna prendere alcune misure di sicurezza per evitare la rottura dei contenitori, come allentare il tappo a vite e mettere il flacone o la provetta a bagnomaria nel forno a microonde. La temperatura e il tempo di fusione dipendono dalla forma del contenitore, dal volume di terreno e dalla fonte di calore. Evitare il surriscaldamento e i riscaldamenti prolungati.

Presentazione

CodicePresentazioneRiempimentoConfezione
LC-94320 piastre pronte da 90 mm21 ± 2 mL1 scatola con 2 confezioni da 10 piastre. Cellophane singolo.
LC-410920 provette da 17 x 145 mm20 ± 0,3 mLProvette di vetro da 17 x 145 mm, etichettatura a inchiostro, tappo metallico non perforabile. 20 provette per scatola.
LC-469110 flaconi pronti da 250 mL200 ± 5 mL1 scatola con 10 flaconi da 250 mL. Sottotappo a vite in plastica.

Composizione

Componenteg/L
Proteoso peptone10,0
Estratto di carne8,00
Estratto di lievito4,00
D-(+)-glucosio20,0
Acetato di sodio5,00
Solfato di magnesio0,20
Solfato di manganese0,05
Fosfato dipotassico2,00
Citrato triammonico2,00
Polisorbato 801,00 (LC-4109: 1,08)
Agar14,0

LC-4691, flaconi

PROTEGGERE SEMPRE DALLA LUCE. EVITARE L'ESPOSIZIONE PROLUNGATA ALLA LUCE.

Controllo qualità

Controllo fisico-chimico

ColoreMarrone giallastro
pH6,2 ± 0,2 a 25 °C (LC-4109: 6,1 ± 0,2)

Controllo microbiologico

Inoculo: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività) / 10³-10⁴ (selettività qualitativa).

Metodologia analitica secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018; A2:2020.

Anaerobiosi. Incubazione a 30 ± 1 °C per 72 ± 3 h.

Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.

MicrorganismoCrescita
Escherichia coliATCC 25922, WDCM 00013Da scarsa a buona
Lactobacillus sakeiATCC 15521Buona (≥ 70 %)
Lactococcus lactisATCC 19435Buona (≥ 70 %)
Pediococcus pentosaceusATCC 33316Buona (≥ 70 %)

LC-4109 e LC-4691: controllo microbiologico

Fusione - piastre per inclusione - inoculo: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività) / 10³-10⁴ UFC (selettività qualitativa).

Incubazione in microaerofilia a 30 ± 1 °C per 72 ± 3 h.

Controllo di sterilità

Incubazione 48 h a 30-35 °C e 48 h a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.

Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.

Bibliografia

  • ATLAS, R.M. & L.C. PARKS (1993) Handbook of Microbiological Culture Media. CRC Press. Boca Raton, Fla. USA
  • CORRY, J.E.L., G.D.W. CURTIS & R.M. BAIRD, Eds. (2003) Handbook of Culture Media for Food Microbiology. Elsevier Science B.V. Amsterdam
  • DOWNES, F.P. & K. ITO (2001) Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Foods. 4th ed. APHA. Washington DC., USA
  • LAWRENCE, D.R. & P.A. LEEDHAM (1979). The detection of acid lactic bacteria. J. Int. Brew. 85:119-121
  • ISO Standard 11133:2014 Microbiology of food, animal feed and water. Preparation, production, storage, and performance testing of culture media.
  • McFADDIN, J. (1985) Media for the isolation-cultivation-identification-maintenance of medical bacteria. Vol. I. William & Wilkins. Baltimore. USA
  • MAN, J.C. de, ROGOSA, M. y SHARPE, M. Elisabeth (1960) A medium for the cultivation of lactobacilli. J. Appl. Bact.; 23:130.
  • SMITH, C.E., G.P. CASEY & W.M. INGLEDEW (1987). The use and understanding of media used in Brewing Microbiology. - Update 1987 - Brewer’s Digest 62(10)12-16, 43.
  • VAN KEER, C., L. van MELKEBEKE, W VERTRIEST, G. HOOZEE & E. Van SCHOONENBERGHE (1983) Growth of Lactobacillus species on different media. J. Inst. Brew. 89:361-363.

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