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Terreni disidratati

Raka-Ray Agar Base

Terreno selettivo per l'isolamento dei batteri lattici nella birra e nella fermentazione della birra.

Codice
LC-1061
Formato
500 g
Conservazione
da 2 a 25 °C
Validità minima garantita
15 mesi

Raka-Ray Agar Base è un terreno selettivo per l'isolamento dei batteri lattici nella birra e nei processi di produzione della birra. Dà ottimi risultati nella rilevazione dei lattobacilli nei processi di fermentazione della birra.

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CodiceFormatoPrezzo
LC-1061500 g

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Caratteristiche principali

Applicazioni

Isolamento selettivo dei batteri lattici.

Settori

Bevande alcoliche.

Preparazione

77,2 g in un litro di acqua distillata, aggiungere 10 mL di monooleato di sorbitano; sterilizzare in autoclave a 121 °C per 15 minuti, poi aggiungere 3 g di feniletanolo.

Principio e uso

Questi microrganismi possono modificare con i loro metaboliti le caratteristiche organolettiche della birra. La rilevazione è complicata dalle esigenze nutrizionali e ambientali di questi microrganismi. Per questi motivi sono state descritte diverse formulazioni per ottimizzare il terreno e ottenere una buona crescita.

Nelle prove comparative, con questo terreno si sono ottenute conte di lattobacilli più alte, perché contiene nutrienti e stimolanti della crescita come l'estratto di fegato, l'estratto di lievito, il triptone, la N-acetilglucosamina e il monooleato di sorbitano. Il maltosio e il fruttosio sono aggiunti come fonti di carboidrati quando alcuni lattobacilli non possono usare il glucosio. La selettività si ottiene aggiungendo 3 g/L di feniletanolo, per inibire i batteri Gram-negativi, e cicloesimide per inibire i lieviti. I solfati forniscono ioni inorganici. La betaina cloridrato è usata come agente stimolante della crescita. L'idrogenocitrato di diammonio e il fosfato di potassio sono agenti tampone. L'aspartato di potassio e il glutammato di potassio sono fonti aggiuntive di aminoacidi. L'agar batteriologico è l'agente solidificante.

Lactobacillus fermentans cresce formando colonie bianco-crema. Se il numero di colonie su ogni piastra supera 300, diluire il campione 1:10 in soluzione fisiologica sterile e ripetere la prova.

Specifiche tecniche

SolubilitàSenza residui
AspettoPolvere fine
Colore del terreno disidratatoBeige
Colore del terreno preparatoTostato
pH finale (25 °C)5,4 ± 0,2
Quantità per litro77,2 g
Conservazioneda 2 a 25 °C

Formula

Componenteg/L
Glucosio5
Agar batteriologico17
Cicloesimide0,007
Solfato di magnesio eptaidrato2
Maltosio10
Fosfato di potassio2
Triptone20
Estratto di lievito5
Fruttosio5
Solfato di manganese tetraidrato0,66
Aspartato di potassio2,5
Glutammato di potassio2,5
Betaina cloridrato2
Idrogenocitrato di diammonio2
Estratto di fegato1
N-acetilglucosamina0,5

Preparazione e uso

Preparazione

Sospendere 77,2 grammi di terreno in un litro di acqua distillata. Aggiungere 10 mL di monooleato di sorbitano. Mescolare bene e sciogliere scaldando e agitando spesso. Far bollire per un minuto fino a completa dissoluzione. Sterilizzare in autoclave a 121 °C per 15 minuti. NON SURRISCALDARE. Raffreddare a 45-50 °C e aggiungere in asepsi 3 grammi di feniletanolo. Mescolare bene e distribuire in piastre.

Istruzioni per l'uso

Tecnica a doppio strato:

  1. Inoculare 0,1 mL del campione su piastre ben asciutte che contengono 15-20 mL di Raka-Ray Agar.
  2. Distribuire sulla superficie del terreno con una bacchetta di vetro sterile.
  3. Coprire la superficie con 4 mL di terreno sterilizzato fuso, raffreddato a 50 °C.
  4. Incubare le piastre a 25-30 °C per 4-7 giorni.

A seconda del tipo di microrganismi, incubare o no in anaerobiosi.

Controllo qualità

Prova microbiologica

Condizioni di incubazione: 25-30 °C / 4-7 giorni.

MicrorganismoSpecifica
Escherichia coliATCC 25922Inibizione totale
Pediococcus acidilacticiATCC 8042Crescita buona
Lactobacillus fermentumATCC 9338Crescita buona
Saccharomyces cerevisiaeATCC 9763Inibizione totale

Bibliografia

  • Methods of Analysis of the ASBC (1976) 7th Edition, The Society, St. Paul, Mn. USA.
  • European Brewing Convention, EBC Analytica Microbiologica: Part II J. Inst. Brewing (1981) 87.303-321.

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