Terreni pronti all'uso
T.S.C. Agar Base (Tryptose Sulfite Cycloserine) ISO
Terreno solido selettivo e differenziale per l'isolamento e l'identificazione presuntiva di Clostridium perfringens, secondo le norme ISO e altre regolamentazioni.
- Codice
- LC-4660
- Categoria
- Terreni pronti all'uso
- Formati
- 3 formati
- Norme
- ISO 14189ISO 7937
- Disponibile anche
- Terreno disidratato, 1 formato (LC-1029)
Il terreno è una modifica del classico TSN Agar, in cui gli antibiotici tradizionali, polimixina e neomicina, sono stati sostituiti dalla cicloserina. La cicloserina si è dimostrata più selettiva per Clostridium perfringens e riduce la formazione di annerimento diffuso. Clostridium perfringens è più resistente alla cicloserina che alla sulfadiazina, alla polimixina e alla neomicina, e questo permette di ridurre la dose. La presenza di metabisolfito di sodio e di citrato ferrico ammonico permette di verificare con un solo saggio tre caratteristiche differenziali di questa specie anaerobia. Queste caratteristiche sono la riduzione del solfito, la crescita a 44-46 °C e la resistenza alla cicloserina.
Caratteristiche principali
Rilevazione e conta selettiva di Clostridium perfringens.
Alimenti, acque.
ISO 14189, ISO 7937.
Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.
Descrizione e tecnica
Descrizione
La cicloserina non tollera temperature superiori a 100 °C e la sua stabilità in soluzione è variabile. Per questo si consiglia di preparare il numero esatto di piastre che si useranno.
Tecnica
Per l'uso, il contenuto del flacone va versato in piastre. Il terreno di coltura va fuso secondo le istruzioni del produttore, a bagnomaria (100 °C) o nel forno a microonde. Aggiungere la cicloserina alla concentrazione di 400 mg/L prima di versare il terreno di coltura nelle piastre o nelle provette.
Non applicare mai calore diretto per fondere un terreno. Le temperature e i tempi di fusione dipendono dalla forma del contenitore, dal volume di terreno e dalla fonte di calore. Prima di fondere qualsiasi terreno, allentare il tappo a vite del contenitore per evitare che si rompa. Il terreno va fuso una sola volta e poi usato. I terreni con agar non vanno fusi più volte, perché le loro caratteristiche cambiano a ogni nuova fusione. Il surriscaldamento va evitato quanto il riscaldamento prolungato, soprattutto per i terreni a pH acido o alcalino. Una volta fuso il terreno, versare le piastre con tecniche asettiche.
Per l'inoculo seguire i metodi standard del laboratorio o le norme applicabili: metodo di semina a spirale, semina per striscio, metodi ecometrici, serie di diluizioni, spatolamento, ecc.
La procedura standard raccomanda l'inoculo in superficie dei campioni o delle loro diluizioni e, una volta assorbiti, la colata di un secondo strato come sigillo per l'anaerobiosi. Dopo l'incubazione a 44 ± 1 °C per 21 ± 3 h, contare le colonie nere che compaiono sulla piastra.
Nota: i terreni solidi si possono fondere in modi diversi: autoclave, bagnomaria e, se il cliente lo ritiene opportuno, anche il forno a microonde. Se si sceglie il forno a microonde, bisogna prendere alcune misure di sicurezza per evitare la rottura dei contenitori, come allentare il tappo a vite e mettere il flacone o la provetta a bagnomaria nel forno a microonde. La temperatura e il tempo di fusione dipendono dalla forma del contenitore, dal volume di terreno e dalla fonte di calore. Evitare il surriscaldamento e i riscaldamenti prolungati.
LC-4661, flaconi da 250 mL
Le tre caratteristiche differenziali sono la riduzione del solfito, la crescita a 46 °C e la resistenza alla cicloserina.
Si può preparare una soluzione di cicloserina in tampone fosfato a pH 8,0 (fosfato dipotassico 16,73 g/L e fosfato monopotassico 0,52 g/L) che, se conservata in frigorifero, si può usare per circa 5 giorni.
La procedura standard raccomanda l'inoculo in superficie dei campioni o delle loro diluizioni e, una volta assorbiti, la colata di un secondo strato come sigillo per l'anaerobiosi. Dopo l'incubazione a 44 ± 1 °C per 23 ± 1 h, contare le colonie nere che compaiono sulla piastra.
Nota: un metodo alternativo è l'uso di TSC Base Medium + Selective Supplement MUP (25 mg) / 200 mL di terreno. Questo reagente permette di identificare Cl. perfringens dalla sua fluorescenza.
LC-4728, piastre per filtrazione su membrana
Le tre caratteristiche differenziali sono la riduzione del solfito, la crescita a 46 °C e la resistenza alla cicloserina.
Raccogliere, diluire e preparare campioni e volumi da filtrare secondo le specifiche, le direttive, le norme ufficiali e/o i risultati attesi.
Filtrare il campione su una membrana con pori da 0,45 µm e porla sulla superficie dell'agar.
In alternativa, si può usare uno strato sottile di TSC agar fuso o di agar come copertura sulla membrana.
Incubare le piastre in anaerobiosi a 44 ± 1 °C per 21 ± 3 h.
(A seconda del campione, delle specifiche, ecc., possono essere necessari tempi di incubazione più lunghi di quelli indicati sopra o temperature di incubazione diverse.)
Dopo l'incubazione, contare le colonie con un precipitato nero di solfuro di ferro.
Le colonie caratteristiche vanno confermate come C. perfringens con ulteriori prove microbiologiche o biochimiche.
Presentazione
| Codice | Presentazione | Riempimento | Confezione |
|---|---|---|---|
| LC-4660 | 10 flaconi pronti da 125 mL | 100 ± 3 mL | 1 scatola con 10 flaconi da 125 mL. Sottotappo a vite in plastica. |
| LC-4661 | 10 flaconi pronti da 250 mL | 200 ± 5 mL | 1 scatola con 10 flaconi da 250 mL. Sottotappo a vite in plastica. |
| LC-4728 | 30 piastre da 55 mm per filtrazione su membrana | 9 ± 1 mL | 1 scatola con 6 buste di plastica da 5 piastre da 55 mm. |
Composizione
| Componente | g/L |
|---|---|
| Digerito enzimatico di caseina | 15,00 |
| Peptone di farina di soia | 5,00 |
| Estratto di lievito | 5,00 |
| Disolfito di sodio | 1,00 |
| Citrato di ammonio e ferro(III) | 1,00 |
| Agar | 18,00 |
Aggiungere 1 fiala di D-Cycloserine Selective Supplement (40 mg).
LC-4728, piastre per filtrazione su membrana
| Componente | g/L |
|---|---|
| Digerito enzimatico di caseina | 15,00 |
| Peptone di soia | 5,00 |
| Estratto di lievito | 5,00 |
| Metabisolfito di sodio | 1,00 |
| Citrato ferrico ammonico | 1,00 |
| Cicloserina | 0,40 |
| Agar | 14,00 |
Controllo qualità
Controllo fisico-chimico
| Colore | Giallo verdastro |
|---|---|
| pH | 7,6 ± 0,2 a 25 °C |
Controllo microbiologico
Prima dell'aggiunta della cicloserina; controllo qualità secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.
Fondere il terreno - preparare le piastre - semina a spirale: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività).
Metodologia analitica secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018; A2:2020.
Anaerobiosi. Incubazione a 44 ± 1 °C per 21 ± 3 h.
Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.
| Microrganismo | Crescita |
|---|---|
| Clostridium perfringensATCC 10543, WDCM 00174 | Buona ≥ 50 %. Colonie nere |
| Clostridium perfringensATCC 13124, WDCM 00007 | Buona ≥ 50 %. Colonie nere |
| Bacillus subtilisATCC 6633, WDCM 00003 | Inibito |
Un doppio strato di TSC agar favorisce l'osservazione dell'annerimento dei ceppi H₂S (+).
LC-4661, flaconi da 250 mL: controllo fisico-chimico
| Colore | Giallo paglierino |
|---|
LC-4728, piastre per filtrazione su membrana: controllo qualità
| Colore | Giallo |
|---|
Filtrazione su membrana / intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività) / 10⁴-10⁶ UFC (selettività) / ≥ 10³ UFC (specificità).
Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.
Metodologia analitica secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018; A2:2020.
Anaerobiosi. Incubazione a 44 ± 1 °C per 21 ± 3 h.
| Microrganismo | Crescita |
|---|---|
| Clostridium perfringensATCC 13124, WDCM 00007, NCTC 8237 | Buona ≥ 50 %. Colonie nere |
| Clostridium perfringensATCC 10543, WDCM 00174 | Buona ≥ 50 %. Colonie nere |
| Bacillus subtilisATCC 6633, WDCM 00003 | Inibito |
Un doppio strato di TSC agar favorisce l'osservazione dell'annerimento dei ceppi H₂S (+).
Controllo di sterilità
Incubazione 48 h a 30-35 °C e 48 h a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.
Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.
Bibliografia
- ATLAS, R.M., L.C. PARKS (1993) Handbook of Microbiological Media. CRC Press, Inc. London.
- DIN Standard 10165. Referenz Verfahren fur Bestimmung von Clostridium perfringens. Fleisch und Fleischerzeugnissen.
- DOWNES, F.P. & K. ITO (2001) Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Foods. 4th ed. American Public Health Association. Washington.
- DIRECTIVA 2015/1787/UE de la Comisión por la que se modifica la Directiva 98/83/CE relativa a la calidad de las aguas destinadas al consumo humano (DO L260 de 7.10.2015 pg 6 y ss).
- FDA (Food and Drug Administration) (1998) Bacteriological Analytical Manual. 8th ed. Rev. A. AOAC International Inc. Gaithersburg. MD.
- ISO 7937 (2004) Microbiology of Food and Animal Feeding Stuffs. Horizontal Method for Enumeration of C. perfringens. Colony-count technique.
- ISO 6461-2 (1986) Water Quality - Detection and enumeration of the spores of sulfite-reducing anaerobes (Clostridia) - Part 2: Method by Membrane Filtration.
- ISO 11133:2014/Amd 1:2018. Microbiology of food, animal feed and water. Preparation, production, storage and performance testing of culture media.
- ISO 14189 (2013) Water quality. Enumeration of Clostridium perfringens - Method using membrane filtration.
- SMITH, L.D. (1981) Clostridial Anaerobic Infections, in Diagnostic Procedures for Bacterial Mycotic and Parasitic Infections. 6th ed. APHA. Washington.
- UNE-EN ISO 11133 (2014). Microbiología de los alimentos para consumo humano, alimentación animal y agua - Preparación, producción, conservación y ensayos de rendimiento de los medios de cultivo.
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