Baird-Parker Agar ISO

Descrizione

La presenza di tellurito e tuorlo d'uovo permette di differenziare le colonie di stafilococchi presuntivamente patogeni. C'è un'alta correlazione tra la prova della coagulasi e la presenza di zone chiare di lipolisi in questo terreno, dovute alla lecitinasi stafilococcica. Gli studi mostrano che quasi il 100 % degli stafilococchi coagulasi-positivi è in grado di ridurre il tellurito, cosa che produce colonie nere, mentre gli altri stafilococchi non sempre ci riescono.

Tecnica

Raccogliere, diluire e preparare campioni e volumi secondo le specifiche, le direttive, le norme ufficiali e/o i risultati attesi.

Seminare le piastre per striscio o con il metodo a spirale. Dopo 24-48 ore di incubazione a 37 ± 1 °C, scegliere le colonie nere, lucide e convesse, con margini regolari, circondate da una zona chiara. Queste si possono identificare in via presuntiva come Staphylococcus aureus coagulasi-positivo.

Aspetto delle colonie dopo 24-48 ore a 37 ± 1 °C (± 2,0):

• Staphylococcus aureus: colonie nere, lucide, convesse, con margini regolari, di 1,0-1,5 mm di diametro, circondate da una zona chiara di lipolisi (reazione di schiarimento del tuorlo d'uovo) larga 2-5 mm. Dopo 48 ore possono comparire ampie zone opache di precipitato che si estendono nel terreno schiarito.
• Altre specie di Staphylococcus: colonie nere, di solito opache, con margini regolari. A volte marroni con zone di schiarimento, che però si presentano come ampie zone opache.
• Micrococcus spp.: colonie marroni, molto piccole e senza zone di schiarimento.
• Bacillus spp.: colonie grandi, di varie tonalità di marrone. Dopo 48 ore possono produrre zone di schiarimento.
• Lieviti: colonie bianche, grandi e lisce.

Precauzioni

Non riutilizzare. Solo per uso professionale.

Non usare il prodotto se mostra segni di contaminazione microbica, alterazione del colore, essiccamento, crepe o altri segni di deterioramento.

LC-4530, piastre a contatto

Terreno di coltura solido selettivo per lo screening degli stafilococchi da campioni di vario tipo, secondo le farmacopee e le norme ISO.

Le piastre a contatto si usano nel controllo microbiologico della disinfezione e della pulizia delle superfici. Agiscono contemporaneamente da campionatore e da terreno di coltura per l'incubazione, senza bisogno di altri passaggi intermedi.

Le piastre hanno una forma adatta a questa funzione e si possono usare con diversi terreni di coltura, a seconda del tipo di microrganismo da controllare. In media le piastre offrono una superficie di contatto di circa 25 cm².

Per l'uso, togliere il coperchio e premere delicatamente il terreno di coltura sulla superficie da controllare, assicurando il contatto tra le due superfici. Si toglie la piastra a contatto e la si chiude con il coperchio, per evitare la contaminazione dall'aria. Si consiglia di fissare il coperchio con nastro adesivo e di etichettare il fondo con i dati del campionamento (luogo, data e ora).

Se le superfici da campionare sono ruvide, le piastre a contatto non fanno un buon contatto, anche aumentando la pressione. In questi casi si consiglia di delimitare un'area di 25 cm², strofinarla energicamente con un tampone sterile bagnato e poi strofinare il tampone sulla piastra a contatto.

Se si verifica l'efficacia di un processo di pulizia o di disinfezione, le piastre a contatto vanno usate entro due ore dalla fine del processo, assicurandosi che la superficie da campionare sia asciutta. Si consiglia di includere sempre controlli positivi, campionando l'area prima della disinfezione o le zone sporche accanto all'area disinfettata.

Il tecnico stabilisce la frequenza del campionamento e della disinfezione secondo criteri di prestazione. Applicare l'agar direttamente sulla superficie da monitorare, distribuendo la pressione su tutta la piastra per 10 secondi. Pulire la superficie in cui è stato raccolto il campione, per togliere ogni traccia di agar.

Le piastre inoculate si incubano a 37 ± 1 °C per 24-48 ± 2 h e si esaminano ogni giorno.

Nota: le piastre a contatto si usano per monitorare la contaminazione microbiologica delle superfici e dell'aria in camere bianche, isolatori, RABS, industrie alimentari e ospedali.

Controllo fisico-chimico

Controllo microbiologico

Inoculo: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività) / 10⁴-10⁶ (selettività), < 100 UFC (specificità, Farmacopea Europea) e ≥ 10³ UFC (specificità, ISO).

Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.

Metodologia analitica secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018; A2:2020.

Aerobiosi. Incubazione a 37 ± 1 °C, lettura dopo 24-48 ± 2 h.

S. aureus ed E. coli: doppia temperatura di incubazione, 30-35 °C / 37 °C.

LC-4530, piastre a contatto: controllo microbiologico

Inoculo: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività) / 10⁴-10⁶ (selettività).

Aerobiosi. Incubazione a 37 ± 1 °C, lettura dopo 24/44 ± 4 h.

Controllo di sterilità

Incubazione 48 h a 30-35 °C e 48 h a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.

Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.

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