Terreni pronti all'uso
Sabouraud TLHTh Agar. EP/USP Double Wrapp. Irradiated
Terreno con neutralizzanti per la conta e la coltivazione dei funghi, secondo le monografie e i metodi di prova armonizzati delle farmacopee.
- Codice
- LC-838
- Categoria
- Terreni pronti all'uso
- Formato
- 20 piastre da 90 mm
- Conservazione
- da 2 a 14 °C
- Validità minima garantita
- 1 mese
Sabouraud Dextrose Agar è una modifica del classico terreno di Sabouraud per la coltivazione dei funghi. Questa formula aiuta a mantenere la morfologia dei funghi e offre un terreno affidabile sia per la coltivazione sia per la differenziazione.
Caratteristiche principali
Monitoraggio ambientale.
20 piastre irradiate da 90 mm, doppio involucro, con 21 ± 2 mL.
1 scatola con 2 buste di cellophane (doppio involucro) da 10 piastre. Ogni confezione porta un indicatore di irraggiamento attaccato sul lato della busta (8-14 kGy).
Descrizione e tecnica
Descrizione
La sua selettività è dovuta al pH basso e all'alta concentrazione di glucosio che, insieme all'incubazione a una temperatura relativamente più bassa (25-30 °C), favoriscono la crescita dei funghi e ostacolano quella dei batteri.
La miscela di peptoni usata è stata scelta per fornire ai funghi tutto l'azoto di cui hanno bisogno.
L'aggiunta degli agenti neutralizzanti TLHTh (Tween 80 - lecitina - istidina - tiosolfato di sodio) può inattivare diversi disinfettanti.
- La combinazione di lecitina, polisorbato 80 e istidina neutralizza le aldeidi e i composti fenolici.
- La combinazione di lecitina e polisorbato 80 neutralizza i composti di ammonio quaternario.
- Il polisorbato 80 neutralizza l'esaclorofene e i derivati mercuriali.
- Il tiosolfato di sodio neutralizza i composti alogenati.
- La lecitina neutralizza la clorexidina.
- L'istidina neutralizza la formaldeide.
Tecnica
Incubare le piastre in aerobiosi a 22 ± 2 °C fino a 5 giorni, o a 35 ± 2 °C per 48-72 h.
(A seconda del campione e delle specifiche possono essere necessari tempi di incubazione più lunghi di quelli indicati sopra o temperature di incubazione diverse.)
Dopo l'incubazione, contare tutte le colonie comparse sulla superficie della membrana.
Calcolare la carica microbica totale per mL di campione moltiplicando il numero medio di colonie per piastra per l'inverso del fattore di diluizione. Riportare i risultati come unità formanti colonia (UFC) per mL, insieme al tempo e alla temperatura di incubazione.
Presentazione
| Presentazione | 20 piastre irradiate da 90 mm, doppio involucro |
|---|---|
| Riempimento | 21 ± 2 mL |
| Confezione | 1 scatola con 2 buste di cellophane (doppio involucro) da 10 piastre. Ogni confezione porta un indicatore di irraggiamento attaccato sul lato della busta (8-14 kGy). |
Composizione
| Componente | g/L |
|---|---|
| D(+) glucosio | 40,0 |
| Peptone di caseina | 5,0 |
| Peptone di carne | 5,0 |
| Lecitina | 0,7 |
| Polisorbato 80 | 5,0 |
| Istidina | 1,0 |
| Tiosolfato di sodio·5H₂O | 0,5 |
| Agar | 15,0 |
Controllo qualità
Controllo fisico-chimico
| Colore | Giallo paglierino |
|---|---|
| pH | 5,6 ± 0,2 a 25 °C |
Controllo microbiologico
Inoculare 10-100 UFC per unità secondo la Farmacopea Europea armonizzata.
Aerobiosi. Incubazione a 20-25 °C, lettura dopo 24-72 ore per i batteri e dopo 3-5 giorni per lieviti e muffe.
| Microrganismo | Crescita |
|---|---|
| Aspergillus brasiliensisATCC 16404, WDCM 00053 | Buona (≥ 70 %) |
| Candida albicansATCC 10231, WDCM 00054 | Buona (≥ 70 %) |
| Escherichia coliATCC 8739, WDCM 00012 | Buona (≥ 50 %) - aspetto atipico delle colonie |
Controllo di sterilità
Incubazione 48 ore a 30-35 °C e 48 ore a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.
Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.
Bibliografia
- AJELLO, L. (1957) Cultural Methods for Human Pathogenic Fungi. J. Chron. Dis. 5:545-551.
- COLIPA (1997) Guidelines on Microbial Quality Management (MQM). Brussels.
- EUROPEAN PHARMACOPOEIA 8.0 (2014) 8th ed. § 2.6.13. Microbiological examination of non-sterile products: Test for specified microorganisms. Harmonised Method. EDQM. Council of Europe. Strasbourg.
- GEORGE, L.K., AJELLO, L. & PAPAGEORGE, C. (1954) Use of Cycloheximide in the Selective Isolation of Fungi Pathogenic to Man. J. Lab. Clin. Med, 44 (422-428).
- HANTSCHKE, D. (1968) Mykosen, 11, (769-778).
- ISO 11133:2014/Amd 1:2018. Microbiology of food, animal feed and water. Preparation, production, storage and performance testing of culture media.
- ISO 16212 Standard (2017) Cosmetics - Microbiology - Enumeration of yeast and mould.
- PAGANO, J. LEVIN, J.D. and TREJO, W. (1957-58) Diagnostic Medium for Differentiation of Species of Candida. Antibiotics Annual, 137-143.
- SABOURAUD, R. (1910) Les Teignes. Masson, Paris.
- USP 33 - NF 28 (2011) <62> Microbiological examination of non-sterile products: Test for specified microorganisms. Harmonised Method. USP Corp. Inc. Rockville. MD. USA.
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