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Terreni pronti all'uso

Trypticasein Soy Agar (TSA) EP/USP/ISO. Triple Wrapped. Irradiated

Terreno solido per uso generale, contenente peptone animale e vegetale, secondo il metodo armonizzato delle farmacopee e le norme ISO.

Codice
LC-839
Formati
2 formati
Controllo qualità ISO 17025
Sì
Norme
Farmacopea EuropeaISO 11930ISO 18415ISO 18416ISO 21149ISO 21150ISO 22717ISO 22718ISO 9308USP

TSA è un terreno molto usato che contiene due peptoni, i quali sostengono la crescita di un'ampia varietà di organismi, anche di quelli molto esigenti come Neisseria, Listeria, Brucella ecc. È usato spesso negli esami diagnostici di routine per la sua affidabilità e per la facile riproducibilità dei risultati.

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CodiceFormatoPrezzo
LC-83920 piastre da 90 mmconservazione da 2 a 14 °C, validità minima 1 mese
LC-453324 piastre a contatto Rodac da 65 mmconservazione da 2 a 25 °C, validità minima 3 mesi

Rispondiamo entro 24 ore con offerta e disponibilità.

Caratteristiche principali

Applicazioni

Conta non selettiva (uso generale).

Settori

Monitoraggio ambientale, cosmetico, alimenti, acque.

Norme

Farmacopea Europea, ISO 11930, ISO 18415, ISO 18416, ISO 21149, ISO 21150, ISO 22717, ISO 22718, ISO 9308, USP.

Controllo

Prova di promozione della crescita secondo le monografie e i metodi di prova armonizzati delle farmacopee e ISO 11133:2014 (LC-4533: ISO 11133:2014/Amd 1:2018).

Descrizione e tecnica

Tecnica

Questo terreno si può inoculare direttamente o dopo un brodo di arricchimento.

Seminare le piastre per striscio o con il metodo a spirale.

Le piastre inoculate si incubano a 30-35 °C per 24-72 h (batteri) e per 3-5 giorni per i funghi (lieviti e muffe). Si esaminano ogni giorno.

(A seconda del campione e delle specifiche possono essere necessari tempi di incubazione più lunghi di quelli indicati sopra o temperature di incubazione diverse.)

Ogni laboratorio deve valutare i risultati secondo le proprie specifiche.

Attenzione: le piastre di Petri si usano per monitorare la contaminazione microbiologica delle superfici e dell'aria in camere bianche, isolatori, RABS, industrie alimentari e ospedali. Il doppio/triplo involucro irradiato garantisce che la confezione stessa non contamini l'ambiente, perché il primo involucro si toglie appena prima di entrare nell'area pulita.

LC-4533, piastre a contatto

Le piastre a contatto si usano nel controllo microbiologico della disinfezione e della pulizia delle superfici. Agiscono contemporaneamente da campionatore e da terreno di coltura per l'incubazione, senza bisogno di altri passaggi intermedi.

Le piastre hanno una forma adatta a questa funzione e si possono usare con diversi terreni di coltura, a seconda del tipo di microrganismo da controllare. In media le piastre offrono una superficie di contatto di circa 25 cm².

Per l'uso, togliere il coperchio e premere delicatamente il terreno di coltura sulla superficie da controllare, assicurando il contatto tra le due superfici. Si toglie la piastra a contatto e la si chiude con il coperchio, per evitare la contaminazione dall'aria. Si consiglia di fissare il coperchio con nastro adesivo e di etichettare il fondo con i dati del campionamento (luogo, data e ora).

Se le superfici da campionare sono ruvide, le piastre a contatto non fanno un buon contatto, anche aumentando la pressione. In questi casi si consiglia di delimitare un'area di 25 cm², strofinarla energicamente con un tampone sterile bagnato e poi strofinare il tampone sulla piastra a contatto.

Se si verifica l'efficacia di un processo di pulizia o di disinfezione, le piastre a contatto vanno usate entro due ore dalla fine del processo, assicurandosi che la superficie da campionare sia asciutta. Si consiglia di includere sempre controlli positivi, campionando l'area prima della disinfezione o le zone sporche accanto all'area disinfettata.

Il tecnico stabilisce la frequenza del campionamento e della disinfezione secondo criteri di prestazione. Applicare l'agar direttamente sulla superficie da monitorare, distribuendo la pressione su tutta la piastra per 10 secondi. Pulire la superficie in cui è stato raccolto il campione, per togliere ogni traccia di agar.

Le piastre inoculate si incubano a 30-35 °C per 24-72 h (batteri) e per 3-5 giorni per i funghi (lieviti e muffe). Si esaminano ogni giorno.

Nota: le piastre a contatto si usano per monitorare la contaminazione microbiologica delle superfici e dell'aria in camere bianche, isolatori, RABS, industrie alimentari e ospedali. Il doppio/triplo involucro irradiato garantisce che la confezione stessa non contamini l'ambiente, perché il primo involucro si toglie appena prima di entrare nell'area pulita.

Le piastre vanno conservate nella confezione originale (blister) per garantirne la stabilità fino alla data di scadenza.

Presentazione

CodicePresentazioneRiempimentoConfezione
LC-83920 piastre irradiate da 90 mm, triplo involucro21 ± 2 mL1 scatola con 3 buste di cellophane (triplo involucro) da 10 piastre. Ogni confezione porta un indicatore di irraggiamento attaccato sul lato della busta (8-14 kGy).
LC-453324 piastre a contatto irradiate, triplo involucro15 ± 2 mL6 piastre a contatto in blister (PET laminato e doppio involucro in PPBO) - 2 buste di cellophane per blister da 6 piastre - 4 blister da 6 piastre (24 piastre) per scatola - ogni blister porta l'indicatore di irraggiamento (8-14 kGy).

Composizione

Componenteg/L
Peptone di caseina15,0
Peptone di soia5,00
Cloruro di sodio5,00
Agar15,0

Controllo qualità

Controllo fisico-chimico

ColoreGiallo paglierino
pH7,3 ± 0,2 a 25 °C

Controllo microbiologico

Prova di promozione della crescita secondo le monografie e i metodi di prova armonizzati delle farmacopee e ISO 11133:2014.

Semina a spirale: intervallo pratico 50-100 UFC (produttività).

Aerobiosi. Incubazione a 30-35 °C. Lettura dopo 18-24 h e fino a 72 h per i batteri e dopo 3-5 giorni per i funghi.

MicrorganismoCrescita
Escherichia coliATCC 8739, WDCM 00012Buona (≥ 70 %)
Staphylococcus aureusATCC 6538, WDCM 00032Buona (≥ 70 %)
Bacillus subtilisATCC 6633, WDCM 00003Buona (≥ 70 %)
Candida albicansATCC 10231, WDCM 00054Buona (≥ 70 %)
Aspergillus brasiliensisATCC 16404, WDCM 00053Buona (≥ 70 %)
Ps. aeruginosaATCC 9027, WDCM 00026Buona (≥ 70 %)
L. monocytogenesATCC 13932, WDCM 00021Buona (≥ 70 %)
Salmonella typhimuriumATCC 14028, WDCM 00031Buona (≥ 70 %)

LC-4533: controllo microbiologico

Prova di promozione della crescita con 50-100 UFC secondo le monografie e i metodi di prova armonizzati delle farmacopee e ISO 11133:2014/Amd 1:2018.

Inoculo: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività).

Metodologia analitica secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018; A2:2020.

Aerobiosi. Incubazione a 30-35 °C. Lettura dopo 18-24 h e fino a 72 h per i batteri e dopo 3-5 giorni per i funghi.

MicrorganismoCrescita
Escherichia coliATCC 8739, WDCM 00012Buona (≥ 70 %)
Staphylococcus aureusATCC 6538, WDCM 00032Buona (≥ 70 %)
Bacillus subtilisATCC 6633, WDCM 00003Buona (≥ 70 %)
Ps. aeruginosaATCC 9027, WDCM 00026Buona (≥ 70 %)
Candida albicansATCC 10231, WDCM 00054Buona (≥ 70 %)
Aspergillus brasiliensisATCC 16404, WDCM 00053Buona (≥ 70 %)
Salmonella typhimuriumATCC 14028, WDCM 00031Buona (≥ 70 %)
L. monocytogenesATCC 13932, WDCM 00021Buona (≥ 70 %)
Stph. aureusATCC 25923, WDCM 00034Buona (≥ 70 %)

Controllo di sterilità

Incubazione 48 ore a 30-35 °C e 48 ore a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.

Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.

Bibliografia

  • ATLAS, R.M. & L.C. PARKS (1993) Handbook of Microbiological Media. CRC Press, Inc. London.
  • COLIPA (1997) Guidelines on Microbial Quality Management (MQM). Brussels.
  • DOWNES, F.P. & K. ITO (2001) Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Food, 4th ed, ASM, Washington D.C.
  • EUROPEAN PHARMACOPOEIA 8.0 (2014) 8th ed. § 2.6.13. Microbiological examination of non-sterile products: Test for specified microorganisms. Harmonised Method. EDQM. Council of Europe. Strasbourg.
  • EUROPEAN PHARMACOPOEIA 10.0 (2020) 10th ed. § 2.6.13. Microbiological examination of non-sterile products: Test for specified microorganisms. Harmonised Method. EDQM. Council of Europe. Strasbourg.
  • FDA (Food and Drug Administration) (1998) Bacteriological Analytical Manual. 8th ed. Rev. A. AOAC International. Gaithersburg. MD.
  • HORWITZ, W. (2000) Official Methods of Analysis of AOAC INTERNATIONAL, 17th ed. Gaithersburg, MD. USA.
  • ISO 9308-1 Standard (2000) Water Quality. Detection and enumeration of E. coli and coliform bacteria. Membrane filtration method.
  • ISO 11731 Standard (2017) Water Quality - Enumeration of Legionella.
  • ISO 11133:2014/Amd 1:2018. Microbiology of food, animal feed and water. Preparation, production, storage and performance testing of culture media.
  • ISO 18415 Standard (2017) Cosmetics - Microbiology - Detection of specified and non-specified microorganisms.
  • ISO 21149 Standard (2017) Cosmetics - Microbiology - Enumeration and detection of aerobic mesophilic bacteria.
  • ISO 21150 Standard (2015) Cosmetics - Microbiology - Detection of Escherichia coli.
  • ISO 22717 Standard (2015) Cosmetics - Microbiology - Detection of Pseudomonas aeruginosa.
  • ISO 22718 Standard (2015) Cosmetics - Microbiology - Detection of Staphylococcus aureus.
  • ISO/TS 22964 (2006) Milk and milk products - Detection of Enterobacter sakazakii.
  • ISO 22964 (2017) Microbiology of the food chain - Horizontal method for the detection of Cronobacter spp.
  • PASCUAL ANDERSON, Mª R. (1992) Microbiología Alimentaria. Díaz de Santos S.A., Madrid.
  • USP 33 - NF 28 (2011) <62> Microbiological examination of non-sterile products: Test for specified microorganisms. Harmonised Method. USP Corp. Inc. Rockville. MD. USA.

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