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Terreni disidratati

APT Agar (All Purpose Tween)

Per la conta e la coltivazione dei batteri lattici eterofermentanti, compresi lattobacilli, leuconostoc e streptococchi lattici.

Codice
LC-2049
Formato
500 g
Conservazione
da 2 a 25 °C
Validità minima garantita
15 mesi

APT Agar fu formulato da Deibel, Evans e Niven mentre studiavano i batteri che richiedono tiamina e i lattobacilli eterofermentanti. Lactobacillus costituisce una parte importante del gruppo dei batteri lattici, molto diffusi in natura. Convertono il lattosio e altri zuccheri in acido lattico e per questo sono chiamati Lactobacillus. Questo terreno è raccomandato per l'esame microbiologico di carne in scatola, pollame, crauti e altri alimenti. APT Agar si usa anche nel dosaggio microbiologico della tiamina.

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CodiceFormatoPrezzo
LC-2049500 g

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Caratteristiche principali

Applicazioni

Conta selettiva dei batteri lattici.

Settori

Alimenti.

Preparazione

59,5 g in 1 litro di acqua distillata con 0,1 g di cicloesimide e 0,2 mL di Tween 80; far bollire per un minuto, sterilizzare in autoclave a 121 °C per 15 minuti.

Principio e uso

APT Agar contiene una miscela di peptoni, che agisce come fonte di carbonio, azoto, vitamine e minerali. L'estratto di lievito fornisce vitamine e nutrienti del complesso B, necessari per la crescita dei batteri. Il destrosio è la fonte di carboidrati. Il cloruro di manganese, il solfato di magnesio e il solfato ferroso sono essenziali per la replicazione dei lattobacilli e degli streptococchi lattici. Il polisorbato 80 è una fonte di acidi grassi necessari ai lattobacilli. Il citrato di sodio inibisce in parte la crescita dei batteri Gram-negativi.

Specifiche tecniche

SolubilitàSenza residui
AspettoPolvere fine
Colore del terreno disidratatoBeige
Colore del terreno preparatoAmbra, leggermente opalescente
pH finale (25 °C)6,7 ± 0,2
Quantità per litro59,5 g
Conservazioneda 2 a 25 °C

Formula

Componenteg/L
Agar batteriologico13,5
D(+) glucosio10
Solfato ferroso0,004
Solfato di magnesio0,8
Cloruro di manganese (II)0,14
Peptone12,5
Cloruro di sodio5
Citrato di sodio5
Tiamina cloridrato0,001
Estratto di lievito7,5
Idrogenofosfato di potassio5

Formula tipica in g/L, adattata e/o integrata secondo necessità per soddisfare i criteri di prestazione.

Preparazione e uso

Preparazione

Sospendere 59,5 grammi di terreno in 1 litro di acqua distillata. Aggiungere 0,1 grammi di cicloesimide sciolti in una quantità minima di etanolo al 40 % e 0,2 mL di Tween 80. Mescolare bene e sciogliere scaldando e agitando spesso. Far bollire per un minuto fino a completa dissoluzione. Sterilizzare in autoclave a 121 °C per 15 minuti.

Istruzioni per l'uso

Per la conta:

  1. Diluire il materiale del campione e inoculare APT Agar con il metodo per inclusione.
  2. Incubare per 1-2 giorni a 35 °C in aerobiosi.

Per l'identificazione:

  1. Inoculare con le colonie sospette per identificare i batteri che causano l'inverdimento dei prodotti a base di carne. Trasferire un campione della coltura sulla superficie di taglio di una salsiccia affumicata.
  2. Mettere la salsiccia in una piastra di Petri contenente un pezzo di carta da filtro bagnata ("camera umida").
  3. Incubare per 18-24 ore a 32 °C e osservare se compare una colorazione verde.
  4. Un campione della salsiccia non inoculato serve da controllo.
  5. Per escludere altri batteri che formano pigmenti (per esempio Pseudomonas), si deve eseguire una prova di verifica (per esempio prova di Gram positiva, prova della catalasi negativa, prova della nitratasi negativa, prova della perossidasi positiva, produzione di acetoina dal glucosio, produzione di ammoniaca dall'arginina, ecc.).

Controllo qualità

Prova microbiologica

Condizioni di incubazione: 35 °C / 18-24 h.

MicrorganismoSpecifica
Lactococcus lactis ssp. lactisATCC 19435Crescita buona
Lacticaseibacillus caseiATCC 393Crescita buona
Lactobacillus acidophilusATCC 4356Crescita buona
Lactiplantibacillus plantarumATCC 8014Crescita buona
Lactobacillus fermentumATCC 9338Crescita buona
Lactobacillus rhamnosusATCC 9595Crescita buona

Bibliografia

  • Evans and Niven, 1951, J. Bact., 62:599.
  • Downes F. P. and Ito K. (Eds.), 2001, Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Foods, 4th ed., APHA, Washington D.C.
  • J.B. Evans and C.F. Niven, Nutrition of the heterofermentative Lactobacilli that cause greening of cured meat products, J. Bact., 62, 599 (1951)

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