Terreni pronti all'uso
Sabouraud Dextrose Agar with Chloramphenicol EP/USP/ISO. Trple Wrapped. Irradiated ISO
Terreno per la conta e la coltivazione dei funghi.
- Codice
- LC-4544
- Categoria
- Terreni pronti all'uso
- Formato
- 24 piastre a contatto Rodac da 65 mm
- Controllo qualità ISO 17025
- Sì
- Conservazione
- da 2 a 25 °C
- Validità minima garantita
- 2 mesi
- Ordine minimo
- 10 confezioni
- Norme
- Farmacopea EuropeaISO 16212USP
Questo terreno di coltura differisce dal classico Sabouraud Agar solo per l'aggiunta di cloramfenicolo. Questo antibiotico termostabile ha un ampio spettro antibatterico, che assicura l'isolamento selettivo dei funghi da campioni molto contaminati da batteri.
Caratteristiche principali
Conta selettiva di lieviti e muffe.
Monitoraggio ambientale, alimenti, coltivazione generale, farmaceutico e veterinario.
Farmacopea Europea, ISO 16212, USP.
24 piastre a contatto irradiate, triplo involucro, con 15 ± 2 mL.
Descrizione e tecnica
Tecnica
Le piastre a contatto si usano nel controllo microbiologico della disinfezione e della pulizia delle superfici. Agiscono contemporaneamente da campionatore e da terreno di coltura per l'incubazione, senza bisogno di altri passaggi intermedi.
Le piastre hanno una forma adatta a questa funzione e si possono usare con diversi terreni di coltura, a seconda del tipo di microrganismo da controllare. In media le piastre offrono una superficie di contatto di circa 25 cm².
Per l'uso, togliere il coperchio e premere delicatamente il terreno di coltura sulla superficie da controllare, assicurando il contatto tra le due superfici. Si toglie la piastra a contatto e la si chiude con il coperchio, per evitare la contaminazione dall'aria. Si consiglia di fissare il coperchio con nastro adesivo e di etichettare il fondo con i dati del campionamento (luogo, data e ora).
Se le superfici da campionare sono ruvide, le piastre a contatto non fanno un buon contatto, anche aumentando la pressione. In questi casi si consiglia di delimitare un'area di 25 cm², strofinarla energicamente con un tampone sterile bagnato e poi strofinare il tampone sulla piastra a contatto.
Se si verifica l'efficacia di un processo di pulizia o di disinfezione, le piastre a contatto vanno usate entro due ore dalla fine del processo, assicurandosi che la superficie da campionare sia asciutta. Si consiglia di includere sempre controlli positivi, campionando l'area prima della disinfezione o le zone sporche accanto all'area disinfettata.
Il tecnico stabilisce la frequenza del campionamento e della disinfezione secondo criteri di prestazione. Applicare l'agar direttamente sulla superficie da monitorare, distribuendo la pressione su tutta la piastra per 10 secondi. Pulire la superficie in cui è stato raccolto il campione, per togliere ogni traccia di agar.
Le piastre inoculate si incubano a 32-35 °C per 24-48 ore e si esaminano ogni giorno. Per i funghi l'incubazione si esegue a 22-25 °C per 5 giorni, con esame giornaliero.
Nota: le piastre a contatto si usano per monitorare la contaminazione microbiologica delle superfici e dell'aria in camere bianche, isolatori, RABS, industrie alimentari e ospedali. Il doppio/triplo involucro irradiato garantisce che la confezione stessa non contamini l'ambiente, perché il primo involucro si toglie appena prima di entrare nell'area pulita.
Presentazione
| Presentazione | 24 piastre a contatto irradiate, triplo involucro |
|---|---|
| Riempimento | 15 ± 2 mL |
| Confezione | 6 piastre a contatto in blister (base in alluminio e PVDC) - 2 buste di cellophane per blister da 6 piastre - 4 blister da 6 piastre (24 piastre) per scatola - ogni blister porta l'indicatore di irraggiamento (8-14 kGy). |
Composizione
| Componente | g/L |
|---|---|
| D(+) glucosio | 40,00 |
| Peptone di caseina | 5,00 |
| Peptone di carne | 5,00 |
| Agar | 15,00 |
| Cloramfenicolo | 0,05 |
Controllo qualità
Controllo fisico-chimico
| Colore | Giallo paglierino |
|---|---|
| pH | 5,6 ± 0,2 a 25 °C |
Controllo microbiologico
Prova di promozione della crescita secondo le monografie e i metodi di prova armonizzati delle farmacopee e ISO 11133:2014.
Inoculo: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività) / 10⁴-10⁶ (selettività).
Aerobiosi. Incubazione a 22,5 ± 2,5 °C. Lettura a 24-72 h per i batteri e a 3-5 giorni per lieviti e muffe.
| Microrganismo | Crescita |
|---|---|
| Aspergillus brasiliensisATCC 16404, WDCM 00053 | Buona (≥ 50 %) |
| Candida albicansATCC 10231, WDCM 00054 | Buona (≥ 50 %) |
| Escherichia coliATCC 8739, WDCM 00012 | Inibito |
| Bacillus subtilisATCC 6633, WDCM 00003 | Inibito |
| S. cerevisiaeATCC 9763, WDCM 00058 | Buona (≥ 50 %) |
Controllo di sterilità
Incubazione 48 h a 30-35 °C e 48 h a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.
Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.
Bibliografia
- AJELLO, L. (1957) Cultural Methods for Human Pathogenic Fungi. J. Chron. Dis. 5:545-551.
- GEORGE, L.K., AJELLO, L. & PAPAGEORGE, C. (1954) Use of Cycloheximide in the Selective Isolation of Fungi Pathogenic to Man. J. Lab. Clin. Med, 44 (422-428).
- ISO 11133:2014/Amd 1:2018. Microbiology of food, animal feed and water. Preparation, production, storage and performance testing of culture media.
- PAGANO, J. LEVIN, J.D. & TREJO, W. (1957-58) Diagnostic Medium for Differentiation of Species of Candida. Antibiotics Annual, 137-143.
- SABOURAUD, R. (1910) Les Teignes. Masson, Paris.
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