Lock&Block Sabouraud TLHTh Agar. Triple Wrapped. Irradiated EP/USP

Descrizione

La sua selettività è dovuta al pH basso e all'alta concentrazione di glucosio che, insieme all'incubazione a una temperatura relativamente più bassa (25-30 °C), favoriscono la crescita dei funghi e ostacolano quella dei batteri.

La miscela di peptoni usata è stata scelta per fornire ai funghi tutto l'azoto di cui hanno bisogno.

L'aggiunta degli agenti neutralizzanti TLHTh (Tween 80 - lecitina - istidina - tiosolfato di sodio) può inattivare diversi disinfettanti.

• La combinazione di lecitina, polisorbato 80 e istidina neutralizza le aldeidi e i composti fenolici.
• La combinazione di lecitina e polisorbato 80 neutralizza i composti di ammonio quaternario.
• Il polisorbato 80 neutralizza l'esaclorofene e i derivati mercuriali.
• Il tiosolfato di sodio neutralizza i composti alogenati.
• La lecitina neutralizza la clorexidina.
• L'istidina neutralizza la formaldeide.

Tecnica

Le piastre a contatto si usano nel controllo microbiologico della disinfezione e della pulizia delle superfici. Agiscono contemporaneamente da campionatore e da terreno di coltura per l'incubazione, senza bisogno di altri passaggi intermedi.

Le piastre hanno una forma adatta a questa funzione e si possono usare con diversi terreni di coltura, a seconda del tipo di microrganismo da controllare. In media le piastre offrono una superficie di contatto di circa 25 cm².

Per l'uso, togliere il coperchio e premere delicatamente il terreno di coltura sulla superficie da controllare, assicurando il contatto tra le due superfici. Si toglie la piastra a contatto e la si chiude con il coperchio, per evitare la contaminazione dall'aria. Si consiglia di fissare il coperchio con nastro adesivo e di etichettare il fondo con i dati del campionamento (luogo, data e ora).

Se le superfici da campionare sono ruvide, le piastre a contatto non fanno un buon contatto, anche aumentando la pressione. In questi casi si consiglia di delimitare un'area di 25 cm², strofinarla energicamente con un tampone sterile bagnato e poi strofinare il tampone sulla piastra a contatto.

Se si verifica l'efficacia di un processo di pulizia o di disinfezione, le piastre a contatto vanno usate entro due ore dalla fine del processo, assicurandosi che la superficie da campionare sia asciutta. Si consiglia di includere sempre controlli positivi, campionando l'area prima della disinfezione o le zone sporche accanto all'area disinfettata.

Il tecnico stabilisce la frequenza del campionamento e della disinfezione secondo criteri di prestazione. Applicare l'agar direttamente sulla superficie da monitorare, distribuendo la pressione su tutta la piastra per 10 secondi. Pulire la superficie in cui è stato raccolto il campione, per togliere ogni traccia di agar.

Le piastre inoculate si incubano a 32-35 °C per 24-48 ore e si esaminano ogni giorno. Per i funghi l'incubazione si esegue a 22-25 °C per 5 giorni, con esame giornaliero.

Dopo il prelievo del campione, il coperchio permette di bloccare la piastra in due posizioni:

• AIR: coperchio chiuso, ma con un certo gioco, per le incubazioni AEROBICHE e ANAEROBICHE.
• CLOSE: coperchio completamente chiuso. Più adatto al trasporto, perché evita il rischio di contaminazione dovuto alla sua possibile apertura durante il trasporto.

Attenzione: le piastre si usano per monitorare la contaminazione microbiologica delle superfici e dell'aria in camere bianche, isolatori, RABS, industrie alimentari e ospedali. Il doppio/triplo involucro irradiato garantisce che la confezione stessa non contamini l'ambiente, perché il primo involucro si toglie appena prima di entrare nell'area pulita.

Involucro resistente alla penetrazione dei vapori di perossido di idrogeno.

Controllo fisico-chimico

Controllo microbiologico

Prova di promozione della crescita con 50-100 UFC secondo le monografie e i metodi di prova armonizzati delle farmacopee e ISO 11133:2014/Amd 1:2018.

Semina a spirale: intervallo pratico 50-100 UFC (produttività).

Metodologia analitica secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018; A2:2020.

Aerobiosi. Incubazione a 20-25 °C. Lettura ≤ 5 giorni.

Controllo di sterilità

Incubazione 48 ore a 30-35 °C e 48 ore a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.

Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.

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