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Terreni pronti all'uso

Lock&Block Sabouraud Chloramphenicol Dextrose Agar. Triple Wrapped. Irradiated EP/USP/ISO

Terreno per la conta e la coltivazione di lieviti e funghi sulle superfici.

Codice
LC-4578
Formato
30 piastre a contatto Rodac da 65 mm
Conservazione
da 15 a 25 °C
Validità minima garantita
3 mesi
Norme
Farmacopea EuropeaISO 11133USP

Questo terreno di coltura differisce dal classico Sabouraud Agar solo per l'aggiunta di cloramfenicolo. Questo antibiotico termostabile ha un ampio spettro antibatterico, che assicura l'isolamento selettivo dei funghi da campioni molto contaminati da batteri.

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CodiceFormatoPrezzo
LC-457830 piastre a contatto Rodac da 65 mm

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Caratteristiche principali

Applicazioni

Crescita e conta selettiva di lieviti e muffe.

Settori

Alimenti, acque.

Norme

Farmacopea Europea, ISO 11133, USP.

Presentazione

30 piastre a contatto irradiate, triplo involucro, con 15 ± 2 mL.

Descrizione e tecnica

Tecnica

Le piastre a contatto si usano nel controllo microbiologico della disinfezione e della pulizia delle superfici. Agiscono contemporaneamente da campionatore e da terreno di coltura per l'incubazione, senza bisogno di altri passaggi intermedi.

Le piastre hanno una forma adatta a questa funzione e si possono usare con diversi terreni di coltura, a seconda del tipo di microrganismo da controllare. In media le piastre offrono una superficie di contatto di circa 25 cm².

Per l'uso, togliere il coperchio e premere delicatamente il terreno di coltura sulla superficie da controllare, assicurando il contatto tra le due superfici. Si toglie la piastra a contatto e la si chiude con il coperchio, per evitare la contaminazione dall'aria. Si consiglia di fissare il coperchio con nastro adesivo e di etichettare il fondo con i dati del campionamento (luogo, data e ora).

Se le superfici da campionare sono ruvide, le piastre a contatto non fanno un buon contatto, anche aumentando la pressione. In questi casi si consiglia di delimitare un'area di 25 cm², strofinarla energicamente con un tampone sterile bagnato e poi strofinare il tampone sulla piastra a contatto.

Se si verifica l'efficacia di un processo di pulizia o di disinfezione, le piastre a contatto vanno usate entro due ore dalla fine del processo, assicurandosi che la superficie da campionare sia asciutta. Si consiglia di includere sempre controlli positivi, campionando l'area prima della disinfezione o le zone sporche accanto all'area disinfettata.

Il tecnico stabilisce la frequenza del campionamento e della disinfezione secondo criteri di prestazione. Applicare l'agar direttamente sulla superficie da monitorare, distribuendo la pressione su tutta la piastra per 10 secondi. Pulire la superficie in cui è stato raccolto il campione, per togliere ogni traccia di agar.

Le piastre inoculate si incubano a 32-35 °C per 24-48 ore e si esaminano ogni giorno. Per i funghi l'incubazione si esegue a 22-25 °C per 5 giorni, con esame giornaliero.

Dopo il prelievo del campione, il coperchio permette di bloccare la piastra in due posizioni:

  • AIR: coperchio chiuso, ma con un certo gioco, per le incubazioni AEROBICHE e ANAEROBICHE.
  • CLOSE: coperchio completamente chiuso. Più adatto al trasporto, perché evita il rischio di contaminazione dovuto alla sua possibile apertura durante il trasporto.

Attenzione: le piastre si usano per monitorare la contaminazione microbiologica delle superfici e dell'aria in camere bianche, isolatori, RABS, industrie alimentari e ospedali. Il doppio/triplo involucro irradiato garantisce che la confezione stessa non contamini l'ambiente, perché il primo involucro si toglie appena prima di entrare nell'area pulita.

Involucro resistente alla penetrazione dei vapori di perossido di idrogeno.

Presentazione

Presentazione30 piastre a contatto irradiate, triplo involucro
Riempimento15 ± 2 mL
Confezione1 scatola con 3 buste di plastica BOPP da 10 piastre (triplo involucro), con all'interno pile da 5 piastre. Ogni confezione porta un indicatore di irraggiamento attaccato sul lato della busta (8-14 kGy). Etichettatura laterale. Coperchio di Petri bloccabile.

Composizione

Componenteg/L
D(+) glucosio40,0
Peptone di caseina5,00
Peptone di carne5,00
Agar15,0
Cloramfenicolo0,05

Controllo qualità

Controllo fisico-chimico

ColoreGiallo paglierino
pH5,6 ± 0,2 a 25 °C

Controllo microbiologico

Semina a spirale: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività) / 10⁴-10⁶ UFC (selettività).

Metodologia analitica secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018; A2:2020.

Aerobiosi. Incubazione a 22,5 ± 2,5 °C. Lettura a 24-72 h per i batteri e a 3-5 giorni per lieviti e muffe.

Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.

MicrorganismoCrescita
Aspergillus brasiliensisATCC 16404Buona (≥ 50 %)
Escherichia coliATCC 8739, WDCM 00012Inibito
Candida albicansATCC 10231, WDCM 00054Buona (≥ 50 %)
Saccharomyces cerevisiaeATCC 9763Buona (≥ 50 %)
Bacillus subtilisATCC 6633, WDCM 00003Inibito

Controllo di sterilità

Incubazione 48 ore a 30-35 °C e 48 ore a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.

Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.

Bibliografia

  • AJELLO, L. (1957) Cultural Methods for Human Pathogenic Fungi. J. Chron. Dis. 5:545-551.
  • EUROPEAN PHARMACOPOEIA 6.0 (2008) 6th ed. § 2.6.13. Microbiological examination of non-sterile products: Test for specified microorganisms. EDQM. Council of Europe. Strasbourg.
  • GEORGE, L.K., AJELLO, L. & PAPAGEORGE, C. (1954) Use of Cycloheximide in the Selective Isolation of Fungi Pathogenic to Man. J. Lab. Clin. Med, 44 (422-428).
  • ISO 11133:2014/Amd 1:2018. Microbiology of food, animal feed and water. Preparation, production, storage and performance testing of culture media.
  • PAGANO, J. LEVIN, J.D. & TREJO, W. (1957-58) Diagnostic Medium for Differentiation of Species of Candida. Antibiotics Annual, 137-143.
  • SABOURAUD, R. (1910) Les Teignes. Masson, Paris.

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