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Terreni pronti all'uso

VRBG TLHTh Agar

Terreno con neutralizzanti per la conta degli enterobatteri.

Codice
LC-4554
Formato
30 piastre a contatto Rodac da 65 mm
Controllo qualità ISO 17025
Sì
Conservazione
da 2 a 25 °C
Validità minima garantita
3 mesi

Questo terreno è una modifica di Violet Red Bile Agar e di MacConkey Agar, come descritto da Mossel et al. L'aggiunta di glucosio a Violet Red Bile Agar migliora sia la crescita degli enterobatteri più esigenti sia il recupero di quelli che hanno subito condizioni avverse. Mossel stesso si rese conto che, togliendo il lattosio e mantenendo il glucosio, l'efficacia del terreno restava stabile.

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CodiceFormatoPrezzo
LC-455430 piastre a contatto Rodac da 65 mm

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Caratteristiche principali

Applicazioni

Conta selettiva degli enterobatteri.

Settori

Monitoraggio ambientale.

Presentazione

30 piastre a contatto, doppio involucro, con 15 ± 2 mL.

Confezione

1 scatola con 5 blister (base in alluminio, PVDC e busta) da 6 piastre a contatto.

Descrizione e tecnica

Descrizione

L'aggiunta degli agenti neutralizzanti TLHTh (Tween 80 - lecitina - istidina - tiosolfato di sodio) può inattivare diversi disinfettanti.

  • La combinazione di lecitina, polisorbato 80 e istidina neutralizza le aldeidi e i composti fenolici.
  • La combinazione di lecitina e polisorbato 80 neutralizza i composti di ammonio quaternario.
  • Il polisorbato 80 neutralizza l'esaclorofene e i derivati mercuriali.
  • Il tiosolfato di sodio neutralizza i composti alogenati.
  • La lecitina neutralizza la clorexidina.
  • L'istidina neutralizza la formaldeide.

Tecnica

Le piastre a contatto si usano nel controllo microbiologico della disinfezione e della pulizia delle superfici. Agiscono contemporaneamente da campionatore e da terreno di coltura per l'incubazione, senza bisogno di altri passaggi intermedi.

Le piastre hanno una forma adatta a questa funzione e si possono usare con diversi terreni di coltura, a seconda del tipo di microrganismo da controllare. In media le piastre offrono una superficie di contatto di circa 25 cm².

Per l'uso, togliere il coperchio e premere delicatamente il terreno di coltura sulla superficie da controllare, assicurando il contatto tra le due superfici. Si toglie la piastra a contatto e la si chiude con il coperchio, per evitare la contaminazione dall'aria. Si consiglia di fissare il coperchio con nastro adesivo e di etichettare il fondo con i dati del campionamento (luogo, data e ora).

Se le superfici da campionare sono ruvide, le piastre a contatto non fanno un buon contatto, anche aumentando la pressione. In questi casi si consiglia di delimitare un'area di 25 cm², strofinarla energicamente con un tampone sterile bagnato e poi strofinare il tampone sulla piastra a contatto.

Se si verifica l'efficacia di un processo di pulizia o di disinfezione, le piastre a contatto vanno usate entro due ore dalla fine del processo, assicurandosi che la superficie da campionare sia asciutta. Si consiglia di includere sempre controlli positivi, campionando l'area prima della disinfezione o le zone sporche accanto all'area disinfettata.

Il tecnico stabilisce la frequenza del campionamento e della disinfezione secondo criteri di prestazione. Applicare l'agar direttamente sulla superficie da monitorare, distribuendo la pressione su tutta la piastra per 10 secondi. Pulire la superficie in cui è stato raccolto il campione, per togliere ogni traccia di agar.

Le piastre inoculate si incubano a 35 ± 2 °C per 24 ± 2 ore e si esaminano ogni giorno.

Nota: le piastre a contatto si usano per monitorare la contaminazione microbiologica delle superfici e dell'aria in camere bianche, isolatori, RABS, industrie alimentari e ospedali.

Presentazione

Presentazione30 piastre a contatto, doppio involucro
Riempimento15 ± 2 mL
Confezione1 scatola con 5 blister (base in alluminio, PVDC e busta) da 6 piastre a contatto.

Composizione

Componenteg/L
Estratto di lievito3,000
Peptone di gelatina7,000
Miscela di sali biliari1,500
D(+) glucosio10,00
Cloruro di sodio5,000
Rosso neutro0,030
Cristal violetto0,002
Lecitina0,700
Polisorbato 805,000
Istidina1,000
Tiosolfato di sodio 5H₂O0,500
Agar13,000

Controllo qualità

Controllo fisico-chimico

ColoreRosso-brunastro
pH7,4 ± 0,2 a 25 °C

Controllo microbiologico

Inoculo: 10-100 UFC secondo la Farmacopea Europea e 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività) / 10⁴-10⁶ UFC (selettività) secondo ISO.

Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.

Metodologia analitica secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018; A2:2020.

Aerobiosi. Incubazione: 30-35 °C, lettura a 24 h (Farmacopea Europea) / 37 ± 1 °C, lettura a 24 h (ISO).

Nota: risultati ATCC 8739/6538/9027 (30-35 °C) e ATCC 8739/25922/19433/14028 (37 °C).

MicrorganismoCrescita
Staphylococcus aureusATCC 6538, WDCM 00032Inibito
Escherichia coliATCC 8739, WDCM 00012Buona (≥ 50 %) - colonie rosso porpora
Ps. aeruginosaATCC 9027, WDCM 00026Buona (50 %) - colonie incolori
Salmonella typhimuriumATCC 14028, WDCM 00031Buona (≥ 50 %) - colonie rosso porpora
Escherichia coliATCC 8739, WDCM 00012Buona (50 %) - colonie rosso porpora - precipitato biliare
Escherichia coliATCC 25922, WDCM 00013Buona (50 %) - colonie rosso porpora - precipitato biliare

Controllo di sterilità

Incubazione 48 h a 30-35 °C e 48 h a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.

Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.

Bibliografia

  • MOSSEL, D.A.A. (1985) Media for Enterobacteriaceae. Int. J. Food Microbiol. 2:27-35.
  • MOSSEL, D.A.A., H. MENGERINK & H.H. SCHOLTS (1962) Use a Modified MacConkey Agar Medium for the selective growth and enumeration of all Enterobacteriaceae. J. Bact. 84:381.
  • MOSSEL, D.A.A., M. VISER & A.M.R. CORNELISSEN (1963) The examination of foods for Enterobacteriaceae using a test of the type generally adopted for the detection of salmonellae. J. Appl. Bact. 26:444-452.
  • MOSSEL, D.A.A. & M.A. RATTO (1970) Rapid detection of sub-lethally impaired cells of Enterobacteriaceae in dried foods. Appl. Microbiol. 20:273-275.
  • PASCUAL ANDERSON, Mª R. (1992) Microbiología Alimentaria. Díaz de Santos, S.A. Madrid.

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