Terreni disidratati
MAL Agar
Terreno usato per la rilevazione e l'isolamento delle salmonelle H₂S positive come S. typhi e per distinguere gli enterobatteri mannitolo positivi e negativi.
- Codice
- LC-1573
- Categoria
- Terreni disidratati
- Formato
- 500 g
- Conservazione
- da 2 a 25 °C
- Validità minima garantita
- 15 mesi
MAL (mannitolo-arabinosio-lattosio) Agar è un terreno nutritivo che si usa per l'isolamento e la rilevazione delle salmonelle H₂S positive come Salmonella typhi e per distinguere le specie mannitolo positive e negative della famiglia Enterobacteriaceae.
Caratteristiche principali
Differenziazione degli enterobatteri.
Alimenti, acque.
41,9 g in un litro di acqua distillata; far bollire per un minuto, non surriscaldare, non sterilizzare in autoclave.
Principio e uso
MAL Agar è stato introdotto per la prima volta negli anni 1980 da Pataky, un biologo di Presov, nella Repubblica Slovacca. Questo terreno ha migliorato e ampliato le condizioni per l'isolamento e la differenziazione degli enterobatteri offerte normalmente dal diffuso XLD Agar. Questo terreno è relativamente poco conosciuto a livello internazionale, perché non ha avuto ampia diffusione nelle pubblicazioni professionali.
MAL Agar è un terreno sia selettivo sia differenziale, che usa il desossicolato di sodio come agente selettivo e quindi inibisce i microrganismi Gram-positivi. La componente nutritiva del terreno è fornita dall'estratto di lievito. I carboidrati fermentabili come mannitolo, D-arabinosio e lattosio sono utilizzati dalle salmonelle e, una volta esauriti, queste attaccano la lisina tramite l'enzima lisina decarbossilasi, con ritorno a un pH alcalino che imita la reazione di Shigella. Per impedire un ritorno simile da parte dei coliformi lisina positivi, sono stati aggiunti lattosio e altri carboidrati, che producono acido in eccesso. Per aumentare la capacità differenziale della formulazione è incluso un sistema indicatore di H₂S, formato da tiosolfato di sodio e citrato ferrico ammonico, che rende visibile la produzione di idrogeno solforato con la formazione di colonie a centro nero. I produttori di H₂S non patogeni non decarbossilano la lisina; per questo la reazione acida che producono impedisce l'annerimento delle colonie dopo 18-24 h di incubazione. Il rosso fenolo è un indicatore delle variazioni di pH. Caratteristica di questo terreno è la combinazione dei risultati biochimici mannitolo positivo, D-arabinosio negativo, lisina decarbossilasi positiva, H₂S positivo e lattosio positivo/negativo, tipica delle salmonelle ma riscontrata solo in modo anomalo nell'altra flora.
Specifiche tecniche
| Solubilità | Senza residui |
|---|---|
| Aspetto | Polvere fine |
| Colore del terreno disidratato | Beige |
| Colore del terreno preparato | Rosso rosato |
| pH finale (25 °C) | 7,3 ± 0,2 |
| Quantità per litro | 41,9 g |
| Conservazione | da 2 a 25 °C |
Formula
| Componente | g/L |
|---|---|
| Agar batteriologico | 12,5 |
| D-arabinosio | 1,5 |
| Citrato ferrico ammonico | 0,8 |
| Lattosio | 4 |
| L-lisina | 5 |
| Mannitolo | 4 |
| Rosso fenolo | 0,1 |
| Cloruro di sodio | 5 |
| Desossicolato di sodio | 1,5 |
| Tiosolfato di sodio | 4,5 |
| Estratto di lievito | 3 |
Formula tipica in g/L, adattata e/o integrata secondo necessità per soddisfare i criteri di prestazione.
Preparazione e uso
Preparazione
Sospendere 41,9 grammi di terreno in un litro di acqua distillata. Mescolare bene e sciogliere scaldando e agitando spesso. Far bollire per un minuto fino a completa dissoluzione. NON SURRISCALDARE. NON STERILIZZARE IN AUTOCLAVE. Distribuire in contenitori adatti.
Istruzioni per l'uso
Inoculare e incubare a una temperatura di 35 ± 2 °C per 18-24 ore.
Controllo qualità
Condizioni di incubazione: 35 ± 2 °C / 18-24 h.
| Microrganismo | Specifica | Reazione caratteristica |
|---|---|---|
| Salmonella enteritidisATCC 13076 | Crescita buona | Colonie gialle con centro nero |
| Escherichia coliATCC 25922 | Parzialmente inibito | Colonie gialle e opache |
| Proteus mirabilisATCC 25933 | Crescita buona | Colonie traslucide senza sciamatura |
Bibliografia
- King, S. & Metzger. Appl. Microbiol. 16:577. 1968.
- King, S. & Metzger. Appl. Microbiol. 16:579, 1968.
- Isenberg, Kominos & Siegel. Appl. Microbiol. 18:656. 1969.
- Hoben, Aston & Peterson. Appl. Microbiol. 26:126. 1973.
- Polloch & Dalhgren. Appl. Microbiol. 27:197. 1974.
- Peloxv, Lavirotte & Pons. Microbia, Tomo I No. 1. 1975.
- Goo et al. Appl. Microbiol. 26:288, 1973.
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