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Terreni pronti all'uso

Thyoglicollate Fluid Medium EP/USP/ISO

Terreno liquido per le prove di sterilità secondo la Farmacopea Europea, la USP e la FDA, e per la coltivazione degli organismi microaerofili e anaerobi.

Codice
LC-4004
Formato
20 provette
Controllo qualità ISO 17025
Sì
Conservazione
da 8 a 25 °C
Validità minima garantita
4 mesi
Norme
Farmacopea EuropeaISO 7937USP

Thioglycolate Fluid Medium è un terreno standard formulato e raccomandato dalla Farmacopea Europea, dalla USP, dall'APHA e dalla FDA. Gli agenti riducenti tioglicolato e L-cistina assicurano un'anaerobiosi adeguata anche per gli anaerobi esigenti.

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CodiceFormatoPrezzo
LC-400420 provette

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Caratteristiche principali

Applicazioni

Conferma di Clostridium e arricchimento (uso generale).

Settori

Controllo qualità del prodotto finito, alimenti, farmaceutico e veterinario.

Norme

Farmacopea Europea, ISO 7937, USP.

Presentazione

20 provette da 16 x 113 mm con 9 ± 0,1 mL.

Descrizione e tecnica

Descrizione

I gruppi -SH di queste sostanze inattivano anche l'arsenico, il mercurio e altri composti di metalli pesanti. I terreni al tioglicolato sono quindi adatti all'esame di materiali che contengono metalli pesanti o conservanti a base di metalli pesanti.

In questa formulazione si usa un agar speciale ad alta viscosità ma con torbidità molto bassa. Si raccomanda un raffreddamento molto lento, per evitare la stratificazione. La maggiore viscosità del terreno liquido al tioglicolato impedisce un rapido assorbimento di ossigeno. Ogni aumento del contenuto di ossigeno è segnalato dall'indicatore redox resazurina sodica, che vira al rosa.

Tecnica

Per l'inoculo delle provette seguire il metodo standard del laboratorio o le norme applicabili (inoculo per infissione, inoculo con l'ansa, serie di diluizioni, ecc.).

La metodologia è conforme ai metodi standard descritti nella Farmacopea.

Inoculare il terreno di coltura con il materiale del campione, facendo in modo che il campione raggiunga il fondo della provetta.

Incubare per almeno 14 giorni alla temperatura ottimale. Gli anaerobi crescono nella parte inferiore del contenitore del terreno di coltura.

Precauzioni e limiti della procedura:

  • Conservare il terreno preparato al riparo dalla luce, a temperatura ambiente.
  • Se prima dell'uso più del 30 % del terreno è rosa, riscaldare una volta a 100 °C per eliminare l'ossigeno assorbito.
  • Non riscaldare il terreno più di una volta: il riscaldamento ripetuto dà origine a tossicità.
  • A causa della variabilità nutrizionale, alcuni ceppi possono crescere poco o non crescere in questo terreno.
  • Alcuni organismi che fermentano il glucosio, in grado di abbassare il pH del terreno fino a un livello critico, possono non sopravvivere in questo terreno. Per isolare questi organismi è necessario un trapianto precoce.

Presentazione

Presentazione20 provette da 16 x 113 mm
Riempimento9 ± 0,1 mL
Confezione1 scatola con 20 provette di vetro da 16 x 113 mm, etichettatura a inchiostro e tappo metallico non perforabile.

Composizione

Componenteg/L
Triptone15,000
Estratto di lievito5,000
D(+) glucosio5,500
Cloruro di sodio2,500
Tioglicolato di sodio0,500
L-cistina0,500
Resazurina0,001
Agar0,750

Controllo qualità

Controllo fisico-chimico

ColoreGiallo
pH7,1 ± 0,2 a 25 °C

Controllo microbiologico

Inoculo: 50-100 UFC (produttività) secondo la Farmacopea Europea armonizzata e la norma ISO 11133.

Aerobiosi. Incubazione a 30-35 °C per 18-72 h (batteri) e a 20-25 °C per 3-5 giorni (muffe e lieviti).

Cl. perfringens ATCC 13124 a 37 °C, lettura dopo 24 ± 3 h.

MicrorganismoCrescita
Clostridium sporogenesATCC 19404, WDCM 00008Buona - nella zona anaerobica
Ps. aeruginosaATCC 9027, WDCM 00026Buona - nella zona aerobica
Staphylococcus aureusATCC 6538, WDCM 00032Buona - nella zona aerobica e anaerobica
Candida albicansATCC 10231, WDCM 00054Buona - nella zona aerobica
Aspergillus brasiliensisATCC 16404Buona - nella zona aerobica
Bacillus subtilisATCC 6633, WDCM 00003Buona - nella zona aerobica
Clostridium perfringensATCC 13124, WDCM 00007 (37 °C)Buona - nella zona anaerobica

Controllo di sterilità

Incubazione 14 giorni a 22,5 ± 2 °C: NESSUNA CRESCITA.

Incubazione 14 giorni a 32,5 ± 2 °C: NESSUNA CRESCITA.

Bibliografia

  • ATLAS, R.M. & L.C. PARKS (1993) Handbook of Microbiological Media. CRC Press Inc. London.
  • DOWNES, F.P. & K. ITO (2001) Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Food. 3rd ed. A.P.H.A. Washington. DC.
  • EUROPEAN PHARMACOPOEIA 7.0 (2011) 7th ed. § 2.6.1. Sterility. Harmonised Method. EDQM. Council of Europe. Strasbourg.
  • FDA (Food and Drug Administration) (1998) Bacteriological Analytical Manual, 8th ed. Rev. A. AOAC International. Gaithersburg. MD.
  • HORWITZ, W. (2000) Official Methods of Analysis. 17th ed. AOAC International. Gaithersburg. MD.
  • ISENBERG, H.D. (Ed.) (1998) Essential Procedures for Clinical Microbiology. ASM. Washington. USA.
  • ISO 7937 (2004) Microbiology of Food and Animal Feeding Stuffs. Horizontal Method for Enumeration of C. perfringens. Colony-count technique.
  • MacFADDIN, J.F. (1985) Media for Isolation-cultivation-identification-maintenance of medical bacteria. Vol. I. Williams & Wilkins. Baltimore. MD. USA.
  • USP 33 - NF 28 (2011) <71> Sterility Tests. Harmonised Method. USP Corp. Inc. Rockville. MD. USA.

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