Vibrio spp. qPCR Kit

La PCR è un metodo usato per amplificare una sequenza specifica di DNA in una reazione che contiene, tra gli altri componenti, una DNA polimerasi termostabile, nucleotidi e primer complementari alla sequenza bersaglio. Quando questa soluzione viene riscaldata, la molecola di DNA si denatura separandosi in due filamenti. Quando la soluzione si raffredda, i primer si appaiano alle sequenze bersaglio nei filamenti di DNA separati e la DNA polimerasi sintetizza un nuovo filamento estendendo i primer con i nucleotidi, creando una copia della sequenza di DNA (ampliconi). La ripetizione di questo ciclo di denaturazione, appaiamento ed estensione aumenta in modo esponenziale il numero di ampliconi bersaglio. Nella real-time PCR il segnale si misura a ogni ciclo, nella maggior parte dei casi con sonde fluorescenti specifiche. La fluorescenza è misurata da un rilevatore e il software associato traccia l'intensità della fluorescenza in funzione del numero di cicli, permettendo di determinare la presenza o l'assenza dell'organismo bersaglio.

Vibrio cholerae, Vibrio parahaemolyticus e Vibrio vulnificus sono patogeni trasmessi dall'acqua e dagli alimenti che causano disturbi gastrointestinali. Tutte e tre le specie di Vibrio sono spesso associate alla contaminazione dei prodotti ittici. Manipolazione, conservazione e cottura inadeguate dei prodotti ittici possono causare infezioni, soprattutto nei piatti in cui i prodotti ittici si consumano crudi o poco cotti. Inoltre, condizioni igieniche inadeguate e fonti d'acqua contaminate aumentano il rischio di infezione quando si consumano alimenti o bevande preparati con acqua contaminata. Questi patogeni hanno causato focolai di malattie trasmesse da alimenti, in particolare nelle regioni in cui i prodotti ittici sono alla base dell'alimentazione o l'accesso ad acqua pulita è scarso, e rappresentano un problema rilevante per la salute pubblica. I metodi tradizionali per rilevare queste specie si basano su colture e prove biochimiche, che non solo richiedono molto tempo e lavoro, ma a volte sono anche imprecise. È quindi indispensabile disporre di un metodo efficiente per rilevare tutte e tre le specie: V. cholerae, V. parahaemolyticus e V. vulnificus. L'amplificazione in vitro del DNA mediante la reazione a catena della polimerasi (PCR) è diventata un'alternativa potente nella diagnostica microbiologica, grazie alla sua rapidità e accuratezza. Negli ultimi anni, i ricercatori hanno sviluppato saggi basati sulla PCR che hanno come bersaglio geni specifici di ciascuna di queste specie. Oggi sono disponibili metodi per la rilevazione basata sulla PCR di sequenze di DNA uniche di V. cholerae, V. parahaemolyticus e V. vulnificus, in particolare con la real-time PCR e sonde fluorescenti specifiche.

I kit per la rilevazione dei patogeni comprendono un controllo interno (IC) nella master mix. Questo controllo viene amplificato insieme alla sequenza di DNA bersaglio, ma con un diverso set di primer e una sonda marcata con un fluoroforo diverso. L'inclusione dell'IC in ogni reazione permette di valutare gli inibitori della PCR nei risultati negativi.

Il kit è destinato alla rilevazione rapida di V. cholerae, V. parahaemolyticus e V. vulnificus in campioni di alimenti, mangimi e campioni ambientali, dopo l'arricchimento in Saline Buffered Peptone Water e l'estrazione del DNA. Il kit è stato validato sugli strumenti ABI PRISM 7500 Fast e PikoReal. Il kit è compatibile con tutti i termociclatori che lavorano nei canali FAM e ROX. Il kit di rilevazione non deve essere usato per procedure diagnostiche.

La procedura comprende i seguenti passaggi principali:

1. Arricchimento del campione
2. Estrazione del DNA
3. Preparazione e corsa della PCR
4. Risultati e interpretazione

Il kit contiene i reagenti per 100 saggi.

Conservare tutti i componenti a -20 °C e proteggerli dalla luce, perché un'esposizione eccessiva alla luce può danneggiare le sonde fluorescenti. Ridurre al minimo i cicli di congelamento e scongelamento. I reagenti conservati come raccomandato si possono usare fino alla data di scadenza indicata sulla provetta.

• Microcentrifuga
• Cappe a flusso laminare/cappe per PCR
• Guanti monouso senza talco
• Micropipette e puntali con filtro privi di nucleasi
• Strumento per real-time PCR
• Provette/strip/piastre multipozzetto e accessori specifici per ogni strumento
• Tampone di lisi / kit di estrazione del DNA (per esempio: LC-6500, LC-6504, LC-6505, LC-6506, LC-6507)

Le procedure di biologia molecolare, come l'estrazione del DNA e l'amplificazione per PCR, richiedono personale qualificato per evitare il rischio di risultati errati, dovuti soprattutto alla contaminazione dei campioni o alla degradazione degli acidi nucleici contenuti nei campioni. Si raccomanda vivamente di avere aree, materiali e attrezzature dedicati per l'estrazione del DNA, la preparazione della PCR e le procedure post-PCR. Il flusso di lavoro in laboratorio deve procedere in una sola direzione, partendo dall'area di estrazione e passando all'area di amplificazione e rilevazione.

L'utente deve sempre fare attenzione a quanto segue:

• Leggere tutte le istruzioni fornite prima di eseguire il saggio.
• Non mescolare reagenti di lotti diversi.
• Indossare DPI adeguati, compresi guanti monouso e camici da laboratorio.
• Conservare ed estrarre il materiale positivo separatamente da tutti gli altri reagenti.

In conformità alla ISO 9001, ogni lotto del kit è provato rispetto a specifiche predeterminate, per garantire una qualità costante del prodotto.

Arricchimento

Si raccomanda un prearricchimento secondo ISO/TS 21872:2017 o BAM (capitolo 9), per 24 h. Si possono usare anche altre procedure di arricchimento adatte e validate.

Estrazione del DNA

Usare un kit o un protocollo adatto per l'estrazione del DNA, come Complex Extraction Kit (LC-6500), Extraction Rapid (LC-6504, LC-6505) o Extraction Column (LC-6506, LC-6507).

Preparazione della PCR: miscela

Indossare sempre i guanti per tutte le procedure di PCR.

1. Scongelare le soluzioni del kit. Mescolare accuratamente e centrifugare brevemente.
2. Preparare le reazioni come descritto nella tabella qui sotto.
3. Mescolare la miscela preparata capovolgendo la provetta e centrifugare brevemente.
4. Distribuire aliquote da 18 µL di miscela preparata nei pozzetti della piastra o nelle provette per PCR.
5. Per il controllo negativo, pipettare 2 µL dalla provetta del controllo negativo (tappo trasparente); pipettare 2 µL di campione di DNA per pozzetto; per il controllo positivo, pipettare 2 µL dalla provetta del controllo positivo (tappo rosso). Ogni provetta o pozzetto di PCR deve avere un volume finale di PCR di 20 µL.
6. Centrifugare brevemente i pozzetti della piastra o le provette per PCR.
7. Mettere le reazioni nello strumento per real-time PCR.

Nota: preparare la reazione di PCR per ogni campione oppure, in alternativa, preparare una Master Mix per il numero totale di reazioni più il 10 %, per coprire le perdite di pipettamento (per esempio, per 10 campioni preparare un volume per 11). In questo caso, preparare la miscela in una provetta sterile da 1,5 mL, priva di nucleasi. Includere 2 reazioni di PCR per i controlli positivo e negativo.

Preparazione della PCR: programma

Impostare lo strumento per real-time PCR secondo il seguente programma di temperatura e tempo:

Per l'analisi dei risultati della PCR, selezionare le opzioni di visualizzazione della fluorescenza. I campioni con valori di Ct positivi sono considerati positivi.

Importante: controllare anche le curve di amplificazione, non solo i valori di Ct. I campioni vanno esaminati sia in scala logaritmica sia in scala lineare e confrontati con il controllo negativo. Regolare la soglia (threshold), se necessario. La valutazione dei risultati dei campioni va fatta dopo aver esaminato i controlli positivo e negativo e averne verificato la validità. Se i risultati dei controlli non sono validi, i risultati dei campioni non si possono interpretare.

Interpretazione: controlli

Per validare il saggio, i controlli devono dare i seguenti risultati:

Se i controlli non corrispondono a questi risultati, l'esperimento va ripetuto.

Interpretazione: campioni

L'interpretazione dei risultati dei campioni è riassunta nella tabella seguente:

(1) Quando la rilevazione di Vibrio e quella dell'IC sono entrambe negative, nel campione sono presenti inibitori della PCR. Diluire il campione di DNA (diluizione di 10 volte) o eseguire un'altra estrazione del DNA e ripetere la qPCR.

(2) Un'alta concentrazione del DNA bersaglio nel campione può portare a un segnale di fluorescenza dell'IC ridotto o assente.

1. Esclusività del 100 %, determinata con 30 ceppi di organismi strettamente correlati o presenti nello stesso habitat.
2. Inclusività del 100 %, determinata su 23 campioni positivi per Vibrio.

Dopo l'arricchimento si può raggiungere un limite di rilevazione da 1 a 10 cellule per 25 g di campione di alimento. Il kit rileva fino a 10³-10⁴ UFC/mL nelle colture di arricchimento. Il kit ha una sensibilità di reazione di 250 pg di DNA bersaglio.