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Terreni pronti all'uso

XLD Agar EP/USP

Terreno solido per l'isolamento delle specie enteropatogene, in particolare Salmonella e Shigella, secondo il metodo armonizzato delle farmacopee e la norma ISO.

Codice
LC-794
Formato
20 piastre da 90 mm
Conservazione
da 15 a 25 °C
Validità minima garantita
1 mese
Norme
Farmacopea Europea

Xylose Lysine Deoxycholate Agar è un terreno selettivo e differenziale, adatto alla rilevazione degli enterobatteri patogeni, in particolare Shigella. Il microbiota Gram-positivo è inibito dalla bassa quantità di desossicolato, mentre Shigella cresce.

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CodiceFormatoPrezzo
LC-79420 piastre da 90 mm

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Caratteristiche principali

Applicazioni

Isolamento selettivo di Salmonella e Shigella.

Settori

Clinico, controllo qualità del prodotto finito, alimenti, farmaceutico e veterinario.

Norme

Farmacopea Europea.

Presentazione

20 piastre pronte da 90 mm con 21 ± 2 mL.

Descrizione e tecnica

La fermentazione dello xilosio, del lattosio o del saccarosio produce l'acidificazione del terreno, che si vede dal viraggio al giallo dell'indicatore intorno alle colonie. Questo colore scompare dopo 24 ore, quindi le osservazioni vanno fatte tra 18 e 24 ore.

La produzione di idrogeno solforato dal tiosolfato si rileva facilmente, perché le colonie diventano più scure per il precipitato di solfuro ferrico. Nel terreno si può osservare anche la decarbossilazione della lisina a cadaverina, perché produce un'alcalinizzazione e di conseguenza l'indicatore vira al rosso.

Tutte queste reazioni permettono una buona differenziazione di Shigella. Edwardsiella e Proteus inconstans sono gli unici enterobatteri, oltre a Shigella, che non fermentano lo xilosio e quindi mostrano una reazione di fermentazione negativa. Salmonella fermenta lo xilosio, ma questo viene consumato rapidamente e l'alcalinizzazione del terreno dovuta alla decarbossilazione della lisina può mascherare la reazione. Le colonie di Salmonella diventano più scure per i precipitati di solfuro ferroso, una proprietà che hanno in comune con Edwardsiella.

Gli altri tipi di enterobatteri non subiscono questo fenomeno, perché l'accumulo di acido dovuto alla fermentazione del lattosio e del saccarosio è così alto da impedire, nelle prime 24 ore, il ritorno del pH per decarbossilazione e anche il precipitato di solfuro ferroso.

Nel controllo qualità sono descritti gli aspetti tipici delle colonie sul terreno XLD dopo 18-48 ore di incubazione a 30-35 °C.

Presentazione

Presentazione20 piastre pronte da 90 mm
Riempimento21 ± 2 mL
Confezione1 scatola con 2 confezioni da 10 piastre. Film singolo in BOPP. Con essiccante. Etichettatura laterale.

Composizione

Componenteg/L
Xilosio3,50
L-lisina cloridrato5,00
Lattosio7,50
Saccarosio7,50
Cloruro di sodio5,00
Estratto di lievito3,00
Rosso fenolo0,08
Desossicolato di sodio2,50
Tiosolfato di sodio6,80
Citrato ferrico ammonico0,80
Agar13,5

Controllo qualità

Controllo fisico-chimico

ColoreRosso
pH7,4 ± 0,2 a 25 °C

Controllo microbiologico

Secondo la USP e la Farmacopea Europea.

Inoculare con 10-100 UFC secondo le farmacopee armonizzate o con 100-1000 UFC per la selettività.

Metodologia analitica secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018; A2:2020.

Aerobiosi. Incubazione a 30-35 °C. Lettura a 18-24/48 h.

MicrorganismoCrescita
Salmonella typhimuriumATCC 14028, WDCM 00031Buona - terreno di coltura e colonie rossi, centro nero (H₂S +)
Salmonella abonyNCTC 6017Buona - terreno di coltura e colonie rossi, centro nero (H₂S +)
Staphylococcus aureusATCC 6538, WDCM 00032Inibito

Controllo di sterilità

Incubazione 48 h a 30-35 °C e 48 h a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.

Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.

Bibliografia

  • ATLAS, R.M., L.C. PARK (1993) Handbook of Microbiological Media for the examination of Food. CRC Press Inc. Boca Raton.
  • DOWNES, F.P. & K. ITO (2001) Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Foods. 4th ed. APHA. Washington DC. USA.
  • EUROPEAN PHARMACOPOEIA 11.0 (2023) 11th ed. § 2.6.13. Microbiological examination of non-sterile products: Test for specified microorganisms. Harmonised Method. EDQM. Council of Europe. Strasbourg.
  • HORWITZ, W. (2000). Official Methods of Analysis of the AOAC International. 17th ed. Gaithersburg Md. USA.
  • ICMSF (1978) Microorganisms in Foods 1. University of Toronto Press.
  • PASCUAL ANDERSON, Mª R. (1992) Microbiología Alimentaria. Díaz de Santos, S.A. Madrid.
  • TAYLOR, W.J. (1965) Isolation of Shigella. I. Xylose Lysine Agars: New media for isolation of enteric pathogens. Am. J. Clin. Path 44:471-475.
  • US FDA (Food and Drug Administration). (1998) Bacteriological Analytical Manual. 8th ed. Rev. A. AOAC International. Gaithersburg, Md. USA.
  • USP 33 - NF 28 (2011) <62> Microbiological examination of non-sterile products: Test for specified microorganisms. Harmonised Method. USP Corp. Inc. Rockville. MD. USA.

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