Lysine Decarboxylase Medium ISO

Quando il terreno è inoculato con un batterio capace di fermentare il destrosio, l'acido prodotto abbassa il pH del terreno e fa virare il colore dell'indicatore dal viola al giallo. La condizione acida stimola anche l'attività decarbossilasica. I batteri che decarbossilano la L-lisina a cadaverina si riconoscono dalla presenza di un colore rosso porpora. La produzione di queste ammine innalza il pH del terreno. Un colore giallo dopo 24 ore indica un risultato negativo, come per Yersinia.

L'estratto di lievito è la fonte di vitamine, in particolare del gruppo B, essenziali per la crescita. Il destrosio è il carboidrato fermentabile. Il porpora di bromocresolo è l'indicatore di pH. La lisina si aggiunge per rilevare la produzione dell'enzima specifico.

Formula tipica in g/L, adattata e/o integrata secondo necessità per soddisfare i criteri di prestazione.

Preparazione

Sospendere 9 grammi di terreno in un litro di acqua distillata. Mescolare bene e sciogliere scaldando e agitando spesso. Far bollire per un minuto fino a completa dissoluzione. Distribuire in quantità di 5 mL in provette con tappo a vite. Sterilizzare in autoclave a 121 °C per 15 minuti.

Secondo ISO 6579

Secondo ISO 6579, per la conferma di Salmonella spp. negli alimenti, nei mangimi, nelle feci animali e nei campioni ambientali:

1. Ottenere colonie presuntive dopo aver inoculato il campione in terreni selettivi di isolamento come XLD Agar (LC-1274) o altri terreni complementari (Chromogenic Salmonella Agar (LC-1122), Brilliant Green Agar (LC-1143), Bismuth Sulfite Agar (LC-1011), DCLS Agar (LC-1045), Deoxycholate Citrate Agar (LC-1067), Hektoen Enteric Agar (LC-1030), Salmonella Shigella Agar (LC-1064) e XLT4 Agar (LC-1159)).
2. Per confermare Salmonella spp., inoculare le colonie presuntive almeno in Triple Sugar Iron Agar (LC-1172), Urea Agar (LC-2180) e Lysine Decarboxylase Medium.
3. Inoculare Lysine Decarboxylase Medium appena sotto la superficie del terreno liquido.
4. Incubare a 37 °C per 24 ± 3 h.
5. La torbidità e un colore viola del terreno dopo l'incubazione indicano una reazione positiva. Un colore giallo indica una reazione negativa.

Secondo ISO 19250

Secondo ISO 19250, per la conferma di Salmonella spp. nei campioni di acqua:

1. Ottenere colonie presuntive dopo aver inoculato il campione in terreni selettivi di isolamento come XLD Agar (LC-1274) o altri terreni complementari (Brilliant Green Agar (LC-1143) o Bismuth Sulfite Agar (LC-1011)).
2. Per confermare Salmonella spp., inoculare le colonie presuntive almeno in Triple Sugar Iron Agar (LC-1172), Urea Agar (LC-2180) e Lysine Decarboxylase Medium.
3. Inoculare Lysine Decarboxylase Medium ben al di sotto della superficie del terreno liquido e incubare a 36 ± 2 °C per 24 ± 3 h.
4. Le colture tipiche di Salmonella mostrano un colore viola dopo l'incubazione.

Secondo ISO 10273

Secondo ISO 10273, per la conferma di Yersinia enterocolitica:

1. Ottenere colonie presuntive dopo aver inoculato il campione in un terreno selettivo di isolamento come Selective Agar Base for Yersinia CIN (LC-1126).
2. Inoculare le colonie in Lysine Decarboxylase Medium appena sotto la sua superficie.
3. Incubare a una temperatura di 30 °C per 24 ± 2 ore.
4. La comparsa di un colore viola dopo l'incubazione indica che la reazione è positiva. Se il colore è giallo, la reazione è negativa.

• ISO 6579 Microbiology of food and animal feeding stuffs - Horizontal method for the detection of Salmonella spp.
• ISO 10273: Microbiology of food and animal feeding stuffs - Horizontal method for the detection of presumptive pathogenic Yersinia enterocolitica.
• Falkow A. S. Clin. Path. 28:598, 1958.
• Ewing Davis and Deaves, Studies in the Serratia Group. U.S. Dept. H.E.W.C.D.C. Atlanta, 1972.
• Edwards and Ewing. Identification of Enterobacteriaceae, Burgess Publ. Co. Minneapolis, Minn., 1961.
• ISO 19250 Water quality - Detection of Salmonella spp.