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Terreni pronti all'uso

Rose Bengal Agar with Chloramphenicol

Terreno selettivo per l'isolamento di lieviti e muffe dall'ambiente e dai prodotti alimentari.

Codice
LC-950
Formati
2 formati
Controllo qualità ISO 17025
Sì

Rose Bengal Agar è un terreno selettivo usato per rilevare e contare muffe e lieviti nei campioni di alimenti. Oltre ai nutrienti necessari per muffe e lieviti, questo terreno contiene anche rosa bengala, che, oltre a colorare di rosa i lieviti, facilita la conta riducendo la crescita rigogliosa di muffe come Rhizopus e Neurospora. Così è più facile rilevare altre muffe a crescita più lenta.

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CodiceFormatoPrezzo
LC-95020 piastre da 90 mmconservazione da 2 a 14 °C, validità minima 1 mese
LC-452930 piastre a contatto Rodac da 65 mmconservazione da 2 a 25 °C, validità minima 2 mesi

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Caratteristiche principali

Applicazioni

Isolamento selettivo di lieviti e muffe.

Settori

Monitoraggio ambientale, alimenti, acque.

Descrizione e tecnica

Descrizione

Il cloramfenicolo contenuto nella formulazione inibisce la crescita batterica, ma non interferisce con la crescita dei funghi.

Tecnica

Per l'inoculo delle piastre seguire i metodi standard del laboratorio o le norme applicabili (metodo di semina a spirale, metodi ecometrici, semina per striscio, serie di diluizioni, spatolamento con spatola di Drigalski, ecc.).

Dopo aver preparato una serie di diluizioni, prelevare 0,1 mL da ogni diluizione e inoculare su piastre di Rose Bengal Agar con una spatola di Drigalski o uno spatolatore di vetro. Incubare a 25 ± 1 °C per 5 giorni e contare i funghi.

Limitazioni

  • Per la bassa concentrazione di antibiotico contenuta nel terreno di coltura, ci si può aspettare che la crescita di alcuni ceppi batterici sia inibita solo in parte.
  • Questo terreno è fotosensibile. Non esporre il terreno alla luce, perché la fotodegradazione del rosa bengala produce composti tossici per i funghi.

LC-4529, piastre a contatto

Terreno solido e selettivo per l'isolamento di lieviti e muffe dall'ambiente e dai prodotti alimentari.

Le piastre a contatto si usano nel controllo microbiologico della disinfezione e della pulizia delle superfici. Agiscono contemporaneamente da campionatore e da terreno di coltura per l'incubazione, senza bisogno di altri passaggi intermedi.

Le piastre hanno una forma adatta a questa funzione e si possono usare con diversi terreni di coltura, a seconda del tipo di microrganismo da controllare. In media le piastre offrono una superficie di contatto di circa 25 cm².

Per l'uso, togliere il coperchio e premere delicatamente il terreno di coltura sulla superficie da controllare, assicurando il contatto tra le due superfici. Si toglie la piastra a contatto e la si chiude con il coperchio, per evitare la contaminazione dall'aria. Si consiglia di fissare il coperchio con nastro adesivo e di etichettare il fondo con i dati del campionamento (luogo, data e ora). Le piastre inoculate si incubano a 25 ± 1 °C per 5 giorni e si esaminano ogni giorno.

Se le superfici da campionare sono ruvide, le piastre a contatto non fanno un buon contatto, anche aumentando la pressione. In questi casi si consiglia di delimitare un'area di 25 cm², strofinarla energicamente con un tampone sterile bagnato e poi strofinare il tampone sulla piastra a contatto.

Se si verifica l'efficacia di un processo di pulizia o di disinfezione, le piastre a contatto vanno usate entro due ore dalla fine del processo, assicurandosi che la superficie da campionare sia asciutta. Si consiglia di includere sempre controlli positivi, campionando l'area prima della disinfezione o le zone sporche accanto all'area disinfettata.

Il tecnico stabilisce la frequenza del campionamento e della disinfezione secondo criteri di prestazione.

Applicare l'agar direttamente sulla superficie da monitorare, distribuendo la pressione su tutta la piastra per 10 secondi.

Nota: le piastre a contatto si usano per monitorare la contaminazione microbiologica delle superfici e dell'aria in camere bianche, isolatori, RABS, industrie alimentari e ospedali. Il doppio/triplo involucro irradiato garantisce che la confezione stessa non contamini l'ambiente, perché il primo involucro si toglie appena prima di entrare nell'area pulita.

Presentazione

CodicePresentazioneRiempimentoConfezione
LC-95020 piastre pronte da 90 mm21 ± 2 mL1 scatola con 2 confezioni da 10 piastre. Cellophane singolo.
LC-452930 piastre a contatto irradiate, doppio involucro15 ± 2 mL1 scatola con 5 blister (base in alluminio, PVDC e busta) da 6 piastre a contatto. Ogni confezione ha un indicatore di irraggiamento (8-14 kGy).

Composizione

Componenteg/L
Peptone micologico5,00
D(+) glucosio (LC-4529: destrosio)10,0
Fosfato di potassio1,00
Solfato di magnesio0,50
Rosa bengala0,05
Cloramfenicolo0,10
Agar15,0

Controllo qualità

Controllo fisico-chimico

ColoreRosa intenso
pH7,2 ± 0,2 a 25 °C

Controllo microbiologico

LC-950: semina a spirale: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività) / 10⁴-10⁶ UFC (selettività).

LC-4529: inoculo: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività) / 10⁴-10⁶ (selettività).

Aerobiosi. Incubazione a 25 ± 1 °C, lettura a 24-48-72 h fino a 5 giorni.

MicrorganismoCrescita
Escherichia coliATCC 8739, WDCM 00012Inibito
Bacillus subtilisATCC 6633, WDCM 00003Inibito
Aspergillus brasiliensisATCC 16404, WDCM 00053Buona (≥ 50 %)
Candida albicansATCC 10231, WDCM 00054Buona (≥ 50 %)

Controllo di sterilità

Incubazione 48 ore a 30-35 °C e 48 ore a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.

Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.

Bibliografia

  • ATLAS, R.M., L.C. PARKS (1993) Handbook of Microbiological Media. CRC Press, Inc. London.
  • CLESCERI, L.S., A.E. GREENBERG & A.D. EATON (1998) Standard Methods for the examination of water and wastewater. 20th ed. APHA. Washington DC.
  • DOWNES, F.P. & K. ITO (2001) Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Foods. 4th ed. APHA. Washington DC.
  • ISO 11133:2014/Amd 1:2018. Microbiology of food, animal feed and water. Preparation, production, storage and performance testing of culture media.
  • MARSHALL, R.T. (1993) Standard methods for the examination of dairy products. 16th ed. APHA, Washington DC.

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