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Terreni pronti all'uso

Legionella BCYE with AB Agar ISO

Terreno base solido usato per la rilevazione, l'isolamento e la conta di Legionella nelle acque, secondo la norma ISO 11731.

Codice
LC-828
Formato
20 piastre da 90 mm
Controllo qualità ISO 17025
Sì
Conservazione
da 2 a 14 °C
Validità minima garantita
1 mese
Norme
ISO 11731

La formulazione attuale di questo terreno è conforme alla norma ISO 11731:2017, ma BCYE Agar si basa su una modifica di un terreno descritto in precedenza. Nel 1979 Feeley e collaboratori descrissero Charcoal Yeast Extract (CYE) Agar come modifica di F-G Agar: sostituirono l'amido di F-G Agar con il carbone attivo e l'idrolizzato di caseina con l'estratto di lievito, ottenendo un recupero migliore di Legionella pneumophila. Nel 1980 Pasculle riferì che CYE Agar si poteva migliorare tamponando il terreno con il tampone ACES e un anno dopo Edelstein aumentò la sensibilità del terreno aggiungendo alfa-chetoglutarato: è la formulazione attuale (BCYE Agar).

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CodiceFormatoPrezzo
LC-82820 piastre da 90 mm

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Caratteristiche principali

Applicazioni

Conta selettiva e isolamento selettivo di Legionella.

Settori

Acque.

Norme

ISO 11731.

Presentazione

20 piastre pronte da 90 mm con 22 ± 2 mL.

Descrizione e tecnica

Descrizione

Il terreno è composto da un terreno base integrato con fattori di crescita (BCYE Agar) e dal terreno selettivo integrato con inibitori della flora accompagnatrice indesiderata. L'estratto di lievito fornisce i nutrienti di base, perché il terreno non contiene carboidrati fermentabili. La L-cisteina, il pirofosfato ferrico e l'alfa-chetoglutarato sono aggiunti per soddisfare le esigenze nutrizionali specifiche delle specie di Legionella.

Il carbone attivo decompone il perossido di idrogeno, un prodotto metabolico tossico, e può anche catturare la CO₂ e modificare la tensione superficiale. L'aggiunta del tampone aiuta a mantenere il pH adatto alla crescita ottimale. La selettività aumenta con l'aggiunta di cefazolina sodica, che agisce contro i batteri Gram-positivi, di polimixina B, che inibisce i batteri Gram-negativi, e di natamicina, che come agente antifungino inibisce la crescita dei lieviti.

Tecnica

Fare riferimento alla norma ISO 11731:2017 o ad altre procedure normalizzate per ottenere colonie isolate dai prelievi e dai campioni. Lasciare riposare le piastre inoculate finché l'inoculo non è stato assorbito. Capovolgere le piastre e incubare a 36 ± 2 °C fino a 2, 3, 5-10 giorni. Per mantenere umida l'atmosfera dell'incubatore, mettere una vaschetta d'acqua sul fondo dell'incubatore. Rabboccare la vaschetta con acqua fresca (se necessario) ogni volta che si esaminano le piastre. L'incubazione in atmosfera d'aria con il 2,5 % (frazione di volume) di CO₂ può favorire la crescita di alcune Legionella, ma non è essenziale.

Esaminare le piastre con un microscopio per piastre almeno tre volte, a intervalli di 2, 3 e fino a 5 giorni, durante il periodo di incubazione di 10 giorni, perché Legionella cresce lentamente e può essere mascherata dalla crescita di altri microrganismi. Registrare il numero di ciascun tipo di colonia presente.

Le colonie di Legionella sono spesso di colore bianco-grigio-blu-porpora, ma possono essere marroni, rosa, verde lime o rosso intenso. Sono lisce, con bordi regolari, e hanno un caratteristico aspetto a vetro smerigliato. Alla luce ultravioletta le colonie di diverse specie hanno un'autofluorescenza bianca brillante, altre sono rosse e L. pneumophila appare verde opaco, spesso con sfumature gialle. Tutte le colonie presuntive vanno confermate con metodi colturali, biochimici, sierologici o genetici.

Nota: se il terreno si usa con il metodo della membrana filtrante, il colore e la crescita delle colonie possono essere alterati. È consigliabile che il tecnico esegua una validazione della membrana filtrante usata.

Presentazione

Presentazione20 piastre pronte da 90 mm
Riempimento22 ± 2 mL
Confezione1 scatola con 2 confezioni da 10 piastre. Cellophane singolo.

Composizione

Componenteg/L
Carbone attivo2,000
Estratto di lievito10,000
Tampone ACES10,000
Idrossido di potassio2,800
Alfa-chetoglutarato1,000
Cisteina cloridrato0,400
Pirofosfato ferrico0,250
Cefazolina sodica0,009
Polimixina B80.000 UI
Pimaricina (sin. natamicina)0,070
Agar15,000

Controllo qualità

Controllo fisico-chimico

ColoreNero
pH6,8 ± 0,2 a 25 °C

Controllo microbiologico

Semina a spirale / metodi MF: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività) / 10⁴-10⁶ UFC (selettività).

Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.

Aerobiosi. Incubazione a 36 ± 2 °C. Lettura a 3-5 giorni, fino a 10 giorni.

MicrorganismoCrescita
Legionella anisaATCC 35292, WDCM 00106Buona (≥ 50 %), colonie grigio-blu
Legionella pneumophilaATCC 33152, WDCM 00107Buona (≥ 50 %), colonie grigio-blu
Escherichia coliATCC 25922, WDCM 00013Inibizione (da parziale a completa)
Enterococcus faecalisATCC 19433, WDCM 00009Inibito

Controllo di sterilità

Incubazione 48 ore a 30-35 °C e 48 ore a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.

Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.

Bibliografia

  • ATLAS, R.M. & L.C. PARKS (1993) Handbook of Microbiological Media. CRC Press. Boca Raton. Fla. USA.
  • CLESCERI, L.S., A.E. GREENBERG & A.D. EATON (1998) Standard methods for the examination of water and wastewater. 9-106. 20th edition. APHA-AWWA-WEF. Washington DC, USA.
  • EDELSTEIN, P.H. (1981) Improved semiselective medium for the isolation of Legionella pneumoniae from contaminated clinical and environmental specimens. J. Clin. Microbiol. 14(3):298.
  • FEELEY, J.C., R.J. GIBSON, G.W. GORMAN, N.C. LANGFORD, J.K. RASHEED, C.D. MACKEL & W.B. BAINE (1979) Charcoal-Yeast Extract Agar: Primary isolation medium for Legionella pneumophila. J. Clin. Microbiol. 10(4) 437.
  • ISO 11731 Standard (2017) Water Quality - Enumeration of Legionella.
  • ISO 11133:2014/Amd 1:2018. Microbiology of food, animal feed and water. Preparation, production, storage and performance testing of culture media.
  • MacFADDIN, J.F. (1985) Media for Isolation-Cultivation-Identification-Maintenance of Medical Bacteria.
  • PASCULLE, A.W., J.C. FEELEY, R.J. GIBSON, L.G. CORDES, R.L. MYEROWITZ, C.M. PATTON, G.W. GORMAN, C.L. CARMACK, J.W. EZZELL & J.N. DOWLING (1980) Pittsburgh pneumonia agent: Direct isolation from human lung tissue. J. Infect. Dis., 141:727.
  • UNE-EN ISO 11133 (2014). Microbiología de los alimentos para consumo humano, alimentación animal y agua - Preparación, producción, conservación y ensayos de rendimiento de los medios de cultivo.
  • WARD, K.W. (1995) Processing and interpretation of specimens for Legionella spp. In "Clinical Microbiology Procedures Handbook" Chap. 12.1 edited by H.D. Isenberg. ASM Press. Washington DC, USA.

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