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Terreni pronti all'uso

Malt Extract Agar Acidified (pH 4,3)

Terreno per la rilevazione, l'isolamento e la conta dei funghi, in particolare lieviti e muffe, anche da campioni di aria e di acqua.

Codice
LC-821
Formati
3 formati
Ordine minimo
15 confezioni

Malt Extract Agar può sostenere molto bene la crescita di quasi tutti i funghi, grazie alla sua composizione equilibrata, e frena la maggior parte dei batteri per la forte acidità.

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CodiceFormatoPrezzo
LC-82120 piastre da 90 mmconservazione da 2 a 25 °C, validità minima 1 mese
LC-407120 provetteconservazione da 8 a 25 °C, validità minima 4 mesi
LC-455030 piastre da 55 mm per acqueconservazione da 2 a 25 °C, validità minima 2 mesi

Rispondiamo entro 24 ore con offerta e disponibilità.

Caratteristiche principali

Applicazioni

Rilevazione e conta selettiva di lieviti e muffe.

Settori

Acque.

Controllo

Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.

Descrizione e tecnica

Tecnica

Raccogliere, diluire e preparare campioni e volumi secondo le specifiche, le direttive, le norme ufficiali e/o i risultati attesi.

Incubare le piastre non capovolte, in aerobiosi, a 20-25 °C fino a 5/7 giorni.

(A seconda del campione, delle specifiche, ecc., possono essere necessari tempi di incubazione più lunghi di quelli indicati sopra o temperature di incubazione diverse.)

Dopo l'incubazione, contare tutte le colonie comparse sulla superficie dell'agar.

Ogni laboratorio deve valutare i risultati secondo le proprie specifiche.

Calcolare la carica microbica totale per mL di campione moltiplicando il numero medio di colonie per piastra per l'inverso del fattore di diluizione, se è stato seminato un campione diluito. Riportare i risultati come unità formanti colonia (UFC) per mL o per g, insieme al tempo e alla temperatura di incubazione.

LC-4550, piastre da 55 mm per filtrazione

Se si desidera una selezione maggiore contro la crescita batterica, regolare nuovamente il pH a 3,5.

LC-4071 e LC-4550, provette e piastre da 55 mm

Filtrare il campione su una membrana con pori da 0,45 µm e porla sulla superficie dell'agar.

Presentazione

CodicePresentazioneRiempimentoConfezione
LC-82120 piastre pronte da 90 mm21 ± 2 mL1 scatola con 2 confezioni da 10 piastre. Cellophane singolo.
LC-407120 provette da 17 x 145 mm20 ± 5 mLProvette di vetro da 17 x 145 mm, etichettatura a inchiostro, tappo metallico non perforabile. 20 provette per scatola.
LC-455030 piastre pronte da 55 mm per filtrazione9 ± 1 mL1 scatola con 6 buste di plastica da 5 piastre da 55 mm.

Composizione

Componenteg/L
Estratto di malto30,00
Peptone di soia3,00
Agar15,00

Controllo qualità

Controllo fisico-chimico

ColoreGiallo
pH4,3 ± 0,2 a 25 °C

Controllo microbiologico

Filtrazione su membrana: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività).

Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.

Aerobiosi. Incubazione a 22,5 ± 2 °C per 3-5 giorni (muffe e lieviti).

MicrorganismoCrescita
Aspergillus brasiliensisATCC 16404Buona (≥ 70 %)
Candida albicansATCC 10231, WDCM 00054Buona (≥ 70 %)

LC-4071, provette: controllo microbiologico

Fondere il terreno - preparare le piastre - trasferire la membrana filtrante.

Filtrazione su membrana: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività).

Controllo microbiologico secondo ISO 11133:2014/Amd 1:2018.

Aerobiosi. Incubazione a 22,5 ± 2 °C per 3-5 giorni (muffe e lieviti).

MicrorganismoCrescita
Aspergillus brasiliensisATCC 16404Buona (≥ 70 %)
Candida albicansATCC 10231, WDCM 00054Buona (≥ 70 %)

LC-4550, piastre da 55 mm: controllo microbiologico

Filtrazione su membrana: intervallo pratico 100 ± 20 UFC, minimo 50 UFC (produttività).

Aerobiosi. Incubazione a 22,5 ± 2 °C fino a 5 giorni per lieviti e muffe.

MicrorganismoCrescita
Aspergillus brasiliensisATCC 16404Buona (≥ 70 %)
Candida albicansATCC 10231, WDCM 00054Buona (≥ 70 %)

Controllo di sterilità

Incubazione 48 ore a 30-35 °C e 48 ore a 20-25 °C: NESSUNA CRESCITA.

Controllo a 7 giorni dopo l'incubazione nelle stesse condizioni.

Bibliografia

  • ATLAS, R.M., L.C. PARKS (1993) Handbook of Microbiological Media. CRC Press, Inc. London.
  • BALLOWS, HAUSLER, HERMAN, ISENBERG & SHADOMY (eds.) (1991) Manual of Clinical Microbiology. ASM. Washington.
  • DOWNES, F.P. & K. ITO (2001) Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Foods. 4th ed. APHA. Washington.
  • FDA (Food and Drug Administration) (1978) Bacteriological Analytical Manual A.O.A.C. Washington.
  • ISO 11133:2014/Amd 1:2018. Microbiology of food, animal feed and water. Preparation, production, storage and performance testing of culture media.
  • ISO 16000-17:2008 Indoor Air - Detection and enumeration of moulds - Culture Based method.
  • RAPP, M. (1974) Indikator-Zusätze zur Keimdifferenzierung auf würze und Malzextrakt Agar. Milchwiss. 29:341-34.
  • REIS, J. (1972) Ein selektives kulturmedium für der Nachweiss von Aspergillus flavus. Zbl. Bokt. Hyg. I. Abt. Orig. 220:564-566.

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